Cystic Fibrosis (CF) is a fatal autosomal recessive inherited genetic disease in humans caused by mutations in the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR) gene. CFTR encodes for a Cl- channel in secretory epithelia. Its absence or malfunction lead to altered regulation of Cl- secretion across epithelial membranes and a phenotype of severe pulmonary disease, pancreatic insufficiency, meconium ileus in newborns and other conditions. Interestingly, the CF phenotype has large variations. Even dizygous twins sharing most environmental influences show clinical variations. This suggests that factors other than CFTR modulate disease severity. One of these factors is a CFTRindependent, Ca2+-activated Cl- current (CaCC) which was demonstrated to ameliorate disease severity in the intestine, lungs and pancreas of CF mouse models and in part in humans. The molecules responsible for these CaCC may be potential therapeutical targets. However, its molecular identity is still unknown. First aim of the study was to investigate the tissue specific and cellular mRNA expression pattern of two new murine CLCA family members (mCLCA5 and mCLCA6) as important prerequisite for protein and functional analyses. Second aim was to characterize the cellular mRNA expression levels of select CaCC candidates and modulators and possibly transcriptional regulatory changes under conditions of CF. This study used laser capture microdissection (LCM) and immune electron microscopy to determine cellular localizations of mCLCA5 and mCLCA6. It used reverse transcriptase quantitative polymerase chain reaction (RT-qPCR) to quantify and compare the mRNA expression of 15 candidate modulators of CaCC in tissues relevant to CF (stomach, duodenum, jejunum, caecum, colon, pancreas, liver, lung, kidney) between two different CF mouse models and their wild type controls. One mouse model (cftrTgH(neoim)Hgu on BALB/c, DBA/2 and C57BL/6 backgrounds) exhibits residual cftr and a milder phenotype than the other mouse model (cftrtm1Cam on NMRI background) with the complete cftr knockout. Candidates tested were the Ca2+-activated Cl- channels mBEST1, mBEST2, mTTYH3, mTMEM16A, mTMEM16F, mTMEM16K, the Ca2+-activated Cltransporters mCLC-3B and mCLC-4, as well as six murine CLCA gene family members (mCLCA1 to -6), which encode proteins that evoke Ca2+-activated Clcurrents but do not form channels themselves. Additionally the Cl- channel SLC26A9 was tested. Similar to their homologs and orthologs within the CLCA gene family, mCLCA5 and mCLCA6 had their own distinct cellular localizations. mCLCA5 mRNA had a broad expression pattern whereas the protein was found exclusively in cytoplasmic granules of granular layer keratinocytes of stratified squamous epithelia suggesting a role in cornification and an inferior relevance in CF. mCLCA6 mRNA was exclusively expressed in enterocytes suggesting a role in transepithelial anion conductance and fluid secretion which may be of relevance in CF. Of all investigated candidates, only mCLCA6 and mCLCA3 were up-regulated in the caecum and stomach of the cftrTgH(neoim)Hgu DBA/2 mice respectively and only the tweety Cl- channel mTTYH3 was markedly down-regulated throughout the intestinal tract of the cftrtm1Cam NMRI mice. This supports mCLCA6 and mCLCA3 as potential mediators of “alternative” CaCC in CF but argues against a direct compensatory mechanism on transcriptional level in the lungs, pancreas or intestine. On the contrary, mTTYH3 may be linked to the more severe intestinal phenotype suggesting a negative modulatory effect. However, it cannot be excluded that any of the candidates tested are regulated on post-transcriptional level or by modulation of the protein activation status. Thus they may still play a role as modulators in the basic Clsecretory defect of CF and await further analyses.
Zystische Fibrose (englisch cystic fibrosis, CF) ist eine tödlich verlaufende, autosomal rezessiv vererbte Erkrankung, die durch Mutationen des CFTR-Gens verursacht wird. CFTR codiert für einen Chloridkanal in sekretorischen Epithelien, dessen Fehlen oder Defekt eine fehlregulierte Chloridströmung und schwerwiegende Lungenerkrankungen, Pankreasinsuffizienz sowie Mekoniumileus bei Neugeborenen hervorrufen kann. Interessanterweise zeigen dizygote Zwillinge, die den identischen CFTR-Defekt tragen und unter gleichen Umweltbedingungen leben, eine hohe klinische und pathologische Variation des CF-Phänotyps. Über den CFTR-Gendefekt hinausgehende genetische Faktoren scheinen den Schweregrad der Erkrankung zu beeinflussen. Zu diesen sogenannten modifier genes gehört eine CFTR-unabhängige, Ca2+-aktivierte Chloridleitfähigkeit (CaCC), die den Darm-, Lungen- und Pankreas-Phänotyp in CFMausmodellen mildert und sich möglicherweise als therapeutisches Ziel eignet. Leider ist deren molekulare Identität und Modulation bislang jedoch ungeklärt. Erstes Ziel der Studie war es, das bislang unbekannte gewebsspezifische und zelluläre mRNA-Expressionsmuster von zwei murinen CLCA Vertretern (mCLCA5 und mCLCA6) zu bestimmen. Zweites Ziel war es die zellulären mRNA Expressionshöhen ausgewählter CaCC-Kandidaten und Modulatoren zu analysieren sowie mögliche regulatorische Veränderungen auf transkriptioneller Ebene unter CF Bedingungen festzustellen. Diese Studie hat mittels Lasermikrodissektion und Immunelektronenmikroskopie die zelluläre Lokalisation von mCLCA5 und mCLCA6 bestimmt. Sie quantifiziert und vergleicht mithilfe der Reversen Transkriptase quantitativen Polymerasekettenreaktion (RT-qPCR) die mRNA-Expression von 14 Vertretern, die potenzielle CaCC- Kandidaten oder -Modulatoren darstellen, in CF-relevanten Geweben (Magen, Duodenum, Jejunum, Zäkum, Kolon, Pankreas, Leber, Lunge, Niere) zwischen zwei verschiedenen CF-Mausmodellen und deren Wildtyp-Kontrollen. Eines der hier untersuchten Mausmodelle (cftrTgH(neoim)Hgu auf BALB/c, DBA/2 und C57BL/6 Hintergründen) zeigt eine residuelle cftr-Aktivität und einen milderen Phänotyp, während das andere Mausmodel (cftrtm1Cam auf NMRI Hintergrund) einen kompletten cftr-Knockout darstellt und einen schwereren Phänotyp zeigt. In den Mausmodellen wurden die Ca2+-aktivierten Chloridkanäle mBEST1, mBEST2, mTTYH3, mTMEM16A, mTMEM16F, mTMEM16K und die Ca2+-aktivierten Chloridtransporter mCLC- 3B und mCLC-4 untersucht. Des Weiteren wurden sechs Mitglieder der CLCA Genfamilie (mCLCA1 bis -6) analysiert, die selbst keine Kanalproteine sind, jedoch Ca2+-aktivierte Chloridströme hervorrufen können. Zusätzlich wurde der Chloridkanal SLC26A9 untersucht. mCLCA5 und mCLCA6 zeigten, ähnlich wie ihre Homologen und Orthologen, jeweils spezifische zelluläre Lokalisationen. mCLCA5 mRNA zeigte ein weites Expressionsmuster, wobei das Protein nur in zytoplasmatischen Granula der Keratinozyten des Stratum granulosum aller Plattenepithelien gefunden wurde, was auf eine Funktion in der Verhornung vermuten lässt, und für CF eine untergeordnete Rolle zu spielen scheint. mCLCA6-mRNA wurde ausschließlich in Enterozyten gefunden. Diese Lokalisation deutet auf eine Funktion bei der transepithelialen Anionenströmung hin, welche für CF von hoher Relevanz sein könnte. Von allen untersuchten Kandidaten waren nur mCLCA6 und mCLCA3 im Zäkum bzw. Magen der cftrTgH(neoim)Hgu DBA/2-Mäuse hochreguliert, wohingegen der Tweety- Chloridkanal mTTYH3 im gesamten Darmtrakt der cftrtm1Cam NMRI-Mäuse herunterreguliert war. Diese Ergebnisse sprechen dafür, dass mCLCA6 und mCLCA3 Mediatoren der „alternativen“ CaCC in CF sein könnten, sprechen jedoch gegen einen direkten kompensatorischen Mechanismus auf transkriptioneller Ebene in Lunge, Pankreas oder Darm, mTTYH3 könnte dagegen sogar mit einem schwerwiegenderen intestinalen Phänotyp im Zusammenhang stehen. Es kann jedoch nicht ausgeschlossen werden, dass einer oder mehrere der anderen untersuchten Kandidaten auf post-transkriptioneller Ebene oder durch Modulation des Proteinaktivierungsstatus reguliert wird und daher trotzdem als Modulator im Erkrankungskomplex CF eine Rolle spielt.
