dc.contributor.author
Monnanda Ponnappa, Bopanna
dc.date.accessioned
2018-06-08T01:14:03Z
dc.date.available
2016-10-18T13:10:16.571Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/13108
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-17306
dc.description
Table of Contents General Introduction 1 1.1 Infection and Immunity 1 1.1.1
Infection 1 1.1.2 Virulence and Virulence Factors 1 1.1.3 Immunity 2 1.1.4
Vaccines 3 1.1.5 Adjuvants and Vaccine Delivery Systems 5 1.1.5.1
Biodegradable Poly Lactic acid (PLA) as Particulate Vaccine Delivery System
and Adjuvant 7 1.1.5.2 NKT cells and Glycolipids Adjuvants 10 1.1.5.2.1 NKT
Cells 10 1.1.5.2.2 Glycolipid Antigens as iNKT Cell Adjuvants 10 1.1.5.2.3
α-Galactosyl Ceramide and Its Analogs 12 1.1.5.2.4 Bacterial Glycolipids 13
Materials and Methods 15 2.1 Materials 15 2.1.1 Instruments and Implements 15
2.1.2 Consumables 16 2.1.3 Chemicals, Polymers and Special Reagents 16 2.1.4
Mice, Cell Lines and Parasite Strains 17 2.1.5 Antibodies, Reagents and Kits
17 2.1.5.1 Antibodies 17 2.1.5.2 Reagents and Kits 18 2.1.5.3 Biochemistry
Reagents 18 2.1.6 Materials for Cell Biology Methods 19 2.1.6.1 Media
components 19 2.1.6.2 Buffers 20 2.2 Methods 21 2.2.1 Vaccine Delivery Systems
21 2.2.1.1 Fabrication of PLA Nano (NP) and Micro Particles (MP) 21 2.2.1.2
Fabrication of 6-Coumarin Loaded Fluorescent PLA Nano and Microparticles 21
2.2.1.3 Formulation of Antigen Loaded PLA Nano- and Microparticles 23
2.2.1.3.1 Depolymerization of Polysaccharide Antigen 23 2.2.1.3.2 Glycolipid
Solubility 23 2.2.1.4 Formulation of PLA Nano (NP) and Microparticles (MP) Co-
encapsulating Glycolipid and Polysaccharide Antigens 23 2.2.1.4 Preparation of
CRM197-CPS3 Protein Glycoconjugate 24 2.2.1.4.1 Treatment of Polysaccharide 24
2.2.1.4.2 Periodate Oxidation 24 2.2.1.4.3 Introduction of Primary Amino
Groups by Reductive Amination 25 2.2.1.4.4 Conjugation of Aminated CPS3 with
CRM 197 Carrier Protein 26 2.2.2 Analytical Methods 27 2.2.2.1 Dynamic Light
Scattering (DLS) Analysis 27 2.2.2.2 Electron Microscopy and Immune Gold
Labeling 27 2.2.2.3 Protein Concentration Determination 28 2.2.2.4 SDS-PAGE
and Western Blot 28 2.2.2.5 Proteomic Analysis of Microvesicles 28 2.2.2.6
Flow Cytometry 30 2.2.2.7 Confocal Microscopy Analysis of Antigen Loaded PLA
Nano and Microparticles 30 2.2.2.8 Estimation of Encapsulated Antigens from
PLA Nano and Microparticles 30 2.2.2.8.1 Particle Lysis Protocol 30 2.2.2.8.2
Flochs Extraction 31 2.2.2.9 MALDI-TOF-MS 31 2.2.2.10 HPAEC-PAD Quantification
of α-GalCer (GSL) from PLA Nano and Microparticles 32 2.2.2.11 Size Exclusion
Chromatography (SEC) of CRM197-CPS3 Protein Glycoconjugate 33 2.2.2.12 Glycan
Microarray 33 2.2.3 Cell Biology Methods 34 2.2.3.1 Cell Culture 34 2.2.3.2
Cultivation of Toxoplasma gondii 35 2.2.3.3 Isolation and Purification of ELVs
35 2.2.3.4 Isolation of Glycosylphosphatidylinositol anchors (GPI) from
Toxoplasma gondii 36 2.2.3.5 Enzyme-linked Immunosorbent Assay (ELISA) 36
2.2.3.6 Cellular Uptake of PLA Nano- and Microparticles 38 2.2.3.7 Splenocyte
Isolation 38 2.2.3.8 Isolation and Production of Bone Marrow Dendritic Cells
38 2.2.3.9 In vitro Stimulation of Splenocytes by PLA Nano and Microparticles
38 2.2.3.10 Dendritic Cell Loading and Splenocyte Activation 39 2.2.3.11
Apoptosis Studies in RAW 264.7 Macrophages 39 2.2.4 In vivo Studies 39 2.2.4.1
Ethics Statement 39 2.2.4.2 Immunization 39 2.2.4.3 Serum collection 40
Fabrication, Characterization and Immunological Evaluation of Polymeric
Particles for the Delivery of Polysaccharide-Glycolipid Combination Vaccines
41 3.1 Introduction 42 3.1.1 Carbohydrate Antigens 42 3.1.2 Streptococcous
pneumoniae 42 3.1.3 Pneumococcal Virulence Factors 43 3.1.4 Pneumococcal
Capsular Polysaccharide 44 3.1.4.1 Streptococcus pneumoniae Serotype-3
Capsular Polysaccharide 47 3.1.5 Vaccines Against Capsular Polysaccharide 47
3.1.5.1 Capsular Polysaccharide Vaccines 48 3.1.5.2 Glycoconjugate Vaccine 49
3.1.6 Nasopharyngeal Carriage of Streptococcus pneumoniae and Natural Immunity
51 3.1.7 Mucosal Delivery of Polysaccharide Antigens 51 3.2 Results and
Discussion 54 3.2.1. Glycolipid Antigens Show Immune Stimulatory Properties
with Adjuvant Activity 54 3.2.1.1. Immunization Studies to Evaluate CPS-3
Specific Immune Responses of Mice Immunized with Glycosphingolipid (GSL) and
Alum as Adjuvant 55 3.2.2. Fabrication and Characterization of Polylactic Acid
(PLA) Nano- and Microparticles 57 3.2.2.1 Fabrication of PLA Microparticles 58
3.2.2.2 Fabrication of PLA Nanoparticles 60 3.2.3. Fabrication of PLA Nano-
and Microparticles Encapsulating Capsular Polysaccharide-3 (CPS-3) Antigen 62
3.2.3.1 Immunization Studies to Evaluate Polysaccharide Specific Immune
Response of Mice Immunized with CPS-3 Encapsulated PLA Nano- and
Microparticles 64 3.2.4. Fabrication of PLA Nano- and Microparticles Co-
Encapsulating Capsular Polysaccharide-3 (CPS-3) and Glycosphingolipid (GSL)
Antigen 66 3.2.4.1 Quantification and Encapsulation Efficiency of CPS-3 and
GSL 68 3.2.4.2. Splenocyte Activation by Soluble and Particulate GSL 70
3.2.4.3. Immunological Evaluation of CPS-3 and GSL Co-encapsulated PLA Nano-
and Microparticles 73 3.2.5. Influences of Polysaccharide Size on the Immune
Response 76 3.2.5.1 Preparation of CRM197-CPS3 Protein Conjugate 76 3.2.5.2
Immunization Studies to Evaluate Polysaccharide (CPS-3) Specific Immune
Responses from Mice Immunized with Glycosphingolipid (GSL) and Alum Adjuvant
80 3.2.6. Mice Immunized with Particulate Formulations and Challenged with
CPS-3 Polysaccharide Show Hyporesponsiveness and No Immunological Memory 82
3.2.6.1. GSL Rescues the Polysaccharide Induced Hyporesponsiveness in Soluble
Formulations 84 3.2.6.2. Glycan Array Analysis Reveals Different Epitope
Recognition 85 3.3 Conclusion 89 Toxoplasma gondii Exosome Like Vesicles
(ELVs) act as Carriers of Virulence Factors 93 4.1 Introduction 94 4.1.1
Extracellular Vesicles 94 4.1.2 Extracellular Vesicles of Pathogens 95 4.1.3
Toxoplasmosis 96 4.1.4 Infection Biology of Toxoplasma gondii 97 4.1.5 Host
Resistance and Immunity to Toxoplasma gondii infections 98 4.2 Results and
Discussion 99 4.2.1 Toxoplasma gondii Tachyzoites Secrete Exosome Like
Vesicles (ELVs) in a Time Dependent Manner 99 4.2.2 Toxoplasma gondii ELVs
Contain Parasitic Proteins and Glycolipids 101 4.2.3 Peritonial Fluid of
Toxoplasma gondii Infected Mice Contains ELVs with Parasite Proteins 103 4.2.4
Toxoplasma ELVs from RH and PTG Strains are Composed of Different Parasitic
Proteins 104 4.2.5 Toxoplasma ELVs from RH and PTG Strains Differ in Parasitic
Glycolipid (GPI) Composition 106 4.2.6 Toxoplasma ELVs Enhance Apoptosis of
RAW Macrophages in the Presence of Exogenous IFN-γ 107 4.3 Conclusion 110 5\.
References 112 Appendix 127
dc.description.abstract
Virulence factors decorate the surface of pathogens or are secreted as
vesicular components of various shapes and sizes, thereby functioning as
particulates and mediating diverse host responses. The knowledge of such
particulate virulence factors and the host responses they mediate can be
exploited in the development of disease intervention strategies like vaccines
and therapeutics. Polysaccharides form an important class of virulence factors
in bacteria like Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenza b and
Neisseria meningitidis. Vaccine development against polysaccharide antigens is
often challenging due to poor immunogenicity, absence of T cell recruitment in
the case of polysaccharide vaccines and variables like the nature of the
carbohydrate antigen, the carrier protein, the conjugation chemistry and the
type of adjuvant used in the case of glycoconjugate vaccines. In the first
part of this thesis (Chapter 3), a vaccine delivery system was developed to
address the shortcomings of existing glycoconjugate vaccines. Capsular
polysaccharide-3 (CPS-3) was used as the antigen and the well-characterized
glycolipid α-GalCer (KRN 7000) was used as the adjuvant. Multiple cmbinations
of CPS-3 and α-GalCer were formulated, including their co-encapsulation into
either nano- or micrometer sized particles of polylactic acid. Incorporation
of antigen and adjuvant in these particles was qualitatively and
quantitatively assessed using biochemical and biophysical techniques. The
particles were found to induce an immune response in mice, highlighting the
immunogenic properties of the formulation. A physical mixture of CPS3 and
α-GalCer as well as a CPS3 polysaccharide-protein conjugate used as controls
produced comparable antibody titers that were lower than that obtained using
the commercially available vaccine Prevnar 13®. Importantly, upon challenge
with CPS-3 antigen, the particulate and soluble formulations, including
Prevnar 13® mice developed a hyporesponsiveness phenotype except for the mice
immunized with the physical CPS-3/α- GalCer mixture. Several studies have
highlighted the hyporesponsiveness observed against the serotype-3 capsular
polysaccharide of S. pneumoniae and this could be a serious drawback of the
commercial vaccine. Using glycan microarray analysis, the antisera from
Prevnar13 and physical CPS-3/α-GalCer mixture immunized groups correlated with
a differential recognition of synthetic CPS-3 substructures highlighting the
possible influence of the polysaccharide size on immune response. Thus, co-
administration of α-GalCer in a physical mixture with CPS-3 leads to an
altered recongition of certain epitopes and can be used to overcome
hyporesponsiveness. The results obtained here have to be further validated
using the other vaccine serotypes of S. pneumoniae. These results combined
with the chemical synthesis of carbohydrate antigens indicate a promising
future for the use of synthetic glycolipids as vaccine adjuvants. This would
assist in the rational design of highly controlled vaccines enhancing the
efficacy and minimizing formulation inconsistencies. The polymeric
particulates of polylactic acid presented in this thesis, have a potential
future application as excellent drypowder multicomponent vaccine formulation
comprising of numerous antigens with well-defined adjuvants formulated on a
single carrier platform. The packaging of the PLA based vaccine formulation
into inhalers increases the shelf life and also encourages the needle-free
self administration of the vaccine through the intranasal routes.
Extracellular vesicles in the form of exosomes, ectosomes, microvesicles and
microparticles are gaining importance as modulators of both systemic and
cellular host responses. Unicellular pathogens like Trypanosama cruzi,
Leishmania donovani, Cryptococcous neoformans, and Plasmodium falciparum are
known to secrete such extracellular vesicles that can act as carriers of
virulence factors. In the second part of this thesis (Chapter 4), the ability
of Toxoplasma gondii to secrete/shed such extracellular vesicles and possible
effector functions mediated was investigated. The study describes the
isolation and characterization of Exosome Like Vesicles (ELVs) from the
peritoneal fluid of Toxoplasma-infected mice and in vitro cultured
tachyzoites. Transmission electron microscopy (TEM) and dynamic light
scattering (DLS) measurements showed that the isolated ELVs had a uniform size
of 80-100 nm. Proteomic analysis revealed several parasitic proteins such as
SAG-1, SAG-2, SAG-3, GRA-3, GRA-6, GRA-7, GRA-12, Myosin, Actin, ROP-2, ROP-4,
ROP-8, MIC-1, MIC-2, MIC-3, AMA-1, HSP-70 and HSP-90. Flow cytometry studies
also showed differential expression of parasite glycolipids,
glycosylphosphatidylinositol (GPI) anchors on these ELVs. The proteins and
glycolipid reported here are immunodominant epitopes important for both
diagnosis and immunoprophylatics. The ELVs, in the presence of an external
inducer, showed enhancement in apoptosis induction of uninfected macrophages.
The particulate nature of the ELVs comprising of several important parasitic
factors might exert an effect on distant cell populations and modulate the
host responses to favor parasite growth. The observations reported here draws
attention to the previously unnoticed role of Toxoplama ELVs. The role of ELVs
in the context of in vivo Toxoplasma infection needs further investigation and
the results might give useful insights for designing reliable prevention
strategies against toxoplasmosis.
de
dc.description.abstract
Virulenzfaktoren finden sich meist auf der Oberfläche von Pathogenen, können
aber auch in Form von Vesikeln unterschiedlicher Form und Größe sezerniert
werden. Dabei rufen sie durch ihre partikulären Eigenschaften
verschiedenartige Reaktionen im Wirt hervor. Die Untersuchung dieser Partikel
und der ausgelösten Reaktionen des Wirtes können entscheidende Hinweise bei
der Bekämpfung von Krankheiten liefern, zum Beispiel bei der Entwicklung von
Impfstoffen oder Therapeutika. Während Polysaccharide bedeutende
Virulenzfaktoren in bakteriellen Erregern wie Streptococcus pneumoniae,
Haemophilus influenzae b und Neisseria meningitidis sind, gestaltet sich die
Entwicklung von Polysaccharid-basierten Impfstoffen oft schwierig. Dies lässt
sich im Falle von Polysaccharidimpfstoffen auf die geringe Immunogenität und
das Fehlen einer T-Zell-vermittelten Immunantwort zurückführen, bei
Glykokonjugatimpfstoffen dagegen auf die Wahl der richtigen Kombination aus
Kohlenhydratantigen, Trägerprotein, Konjugationschemie und Art des Adjuvans.
Der erste Teil dieser Arbeit (Kapitel 3) beschreibt die Entwicklung eines
Formulierungssystems für Impfstoffe, um die Schwachstellen bestehender
Glykokonjugatimpfstoffe zu umgehen. Als Antigen wurde das Kapselpolysaccharid
von S. pneumoniae Serotyp 3 (CPS-3), als Adjuvans das gut charakterisierte
Glykolipid α-GalCer (KRN 7000) gewählt. Es wurden Formulierungen verschiedener
Kombinationen aus CPS-3 und α-GalCer hergestellt, darunter die Verkapselung
beider Komponenten in mikro- oder nanometergroßen Partikeln aus
Polymilchsäure. Der Einschluss von Antigen und Adjuvans wurde dabei mit Hilfe
biochemischer und biophysischer Methoden qualitativ und quantitativ verfolgt.
Die Partikel induzierten eine Immunantwort in Mäusen, was die immunogenen
Eigenschaften der Formulierung bestätigt. Eine physikalische Mischung aus
CPS-3 und α-GalCer und ein CPS-3-Polysaccharid-Protein- Konjugat erzeugten
vergleichbare Antikörperspiegel, die jedoch geringer waren als die durch den
kommerziell erhältlichen Impfstoff Prevnar13® hervorgerufenen.
Bemerkenswerterweise wurde bei Verabreichung von CPS-3 zur Simulation einer
natürlichen Infektion in mit allen partikulären und löslichen Formulierungen –
einschließlich Prevnar13 – behandelten Mäusen ein hyporesponsiver Phänotyp
beobachtet, mit Ausnahme der physikalischen CPS-3/α- GalCer-Mischung. Diese
induzierte Hyporesponsivität ist eine bekannte Eigenschaft von S. pneumoniae
CPS-3 und könnte ein entscheidender Nachteil des kommerziell erhältlichen
Impfstoffes sein. Mittels Glykan-Mikroarrayanalyse stellte sich heraus, dass
die Antiseren der mit Prevnar13 und der physikalischen CPS-3/α-GalCer-Mischung
immunisierten Mäuse sich durch unterschiedliche Erkennungsmuster synthetischer
CPS-3-Substrukturen auszeichneten. Dies weist auf einen möglichen Zusammenhang
zwischen Immunantwort und Größe des Polysaccharids hin. Durch die Applikation
einer physikalischen Mischung aus α-GalCer und CPS-3 lässt sich also eine
Veränderung des Erkennungsmusters der Kohlenhydratepitope hervorrufen, was mit
ausbleibender Hyporesponsivität einhergeht. Die hier gezeigten Ergebnisse
sollen im nächsten Schritt mittels weiterer S. pneumoniae-Serotypen auf
Allgemeingültigkeit überprüft werden. In Kombination mit dem Fortschritt in
der Synthese von kleinstmöglichen Kohlenhydratantigenen könnte mit den
gewonnenen Erkenntnissen ein großer Schritt hin zu gezielt und kontrolliert
hergestellten Impfstoffen mit stark verbesserten Wirkungsprofilen getätigt
werden, indem Unzulänglichkeiten durch die Formulierung schlecht
charakterisierter Inhaltsstoffe ausgeschlossen werden. Die hier präsentierten
Polymilchsäurepartikel könnten in der Herstellung von Trockenpulverimpfstoffen
Anwendung finden, die potentiell mehrere Antigene in Kombination mit gut
charakterisierten Adjuvantien auf einer einzigen Trägerplattform präsentieren.
Durch die gegenüber proteinbasierten Impfstoffen erhöhte Haltbarkeit wird
außerdem eine intranasale Applikation in Inhalatoren ermöglicht, was ein
großer Fortschritt im Zuge der Entwicklung spritzenfreier Impfstoffe wäre.
Extrazelluläre Vesikel in Form von Exosomen, Ektosomen, Mikrovesikeln und
Mikropartikeln gewinnen zunehmend an Bedeutung, weil sie Reaktionen im Wirt
auf sowohl systemischer als auch zellulärer Ebene beeinflussen können.
Einzellige Pathogene wie Trypanosama cruzi, Leishmania donovani, Cryptococcous
neoformans und Plasmodium falciparum sezernieren solche Vesikel, die als
Träger von Virulenzfaktoren fungieren können. Im zweiten Teil dieser Arbeit
(Kapitel 4) wurde die Fähigkeit von Toxoplasma gondii untersucht,
extrazelluläre Vesikel freizusetzen. Beschrieben ist die Isolierung und
Charakterisierung von Exosom-ähnlichen Vesikeln (ELVs) aus der peritonealen
Flüssigkeit Toxoplasma-infizierter Mäuse sowie aus in vitro kultivierten
Tachyzoiten. Messungen mittels Transmissionselektronenmikroskopie (TEM) und
dynamischer Lichtstreuung (DLS) zeigten, dass die ELVs eine gleichmäßige Größe
von 80-100 nm haben. Durch Analyse des ELV- Proteoms wurden verschiedene
Proteine des Parasiten wie SAG-1, SAG-2, SAG-3, GRA-3, GRA-6, GRA-7, GRA-12,
Myosin, Aktin, ROP-2, ROP-4, ROP-8, MIC-1, MIC-2, MIC-3, AMA-1, HSP-70 und
HSP-90 identifiziert. Glykosylphosphatidylinositolanker (GPI), parasitäre
Glykolipide, wurden mittels Durchflusszytometrie auf den ELVs gefunden. Die
hier beschriebenen Proteine und Glykolipide sind immundominante Epitope, die
sowohl für die Diagnostik als auch für die Immunprophylaxe eine wichtige Rolle
spielen. Darüber hinaus bewirkten die ELVs eine Verstärkung der
Apoptoseauslösung durch einen externen Stimulus in nicht infizierten
Makrophagen. Durch die partikulären Eigenschaften der ELVs und die Anwesenheit
diverser wichtiger parasitärer Faktoren könnten die Vesikel Einfluss auf
räumlich entfernte Zellpopulationen nehmen und die angeborene Immunantwort des
Wirtes zu Gunsten des Parasites modifizieren. Die hier beschriebenen
Entdeckungen deuten auf eine bisher unbekannte Funktion der ELVs von
Toxoplasma hin, die eine bedeutende Rolle im Zusammenhang mit Infektionen
spielen kann und weitergehender Untersuchungen bedarf. Somit lassen sich
möglicherweise wichtige Aufschlüsse in der Entwicklung verlässlicher
Präventionsstrategien gegen Toxoplasmose gewinnen.
de
dc.format.extent
XIV, 164 Seiten
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
Virulence factors
dc.subject
Streptococcus pneumoniae
dc.subject
Extracellular vesicles
dc.subject
Polylactic acid
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::572 Biochemie
dc.title
Host Responses to Presentation of Particulate Virulence Factors of Bacteria
and Parasites
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Sutapa Chakrabarti
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Peter H. Seeberger
dc.date.accepted
2015-10-20
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000103254-6
dc.title.translated
Host-Reaktionen auf die partikulären Virulenzfaktoren von Bakterien und
Parasiten
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000103254
refubium.mycore.derivateId
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