Since T cells play a crucial role in orchestrating the immune response, a detailed knowledge of TCR signaling is pivotal for understanding aberrant T or B cell responses in autoimmunity or cancer. The transcription factor NF-kappaB triggers the expression of many target genes involved in antigen-specific proliferation, differentiation and survival of T cells, thus representing a central mediator of T cell activation. At a molecular level, the IkB kinase (IKK) complex represents the gatekeeper of NF-kappaB activation in many pathways. In T cells, formation of a Carma1/Bcl10/Malt1 (CBM) complex was shown to be essential for IKK activation. However, the molecular mechanisms, which connect CBM complex formation to IKK activation, had remained elusive. In the presented work Malt1 was identified as a novel target for regulatory ubiquitination in the course of TCR signaling. The ubiquitin ligase TRAF6 (TNF receptor associated factor 6) was shown to associate with Malt1 and to mediate Malt1 ubiquitination in vitro and in vivo by attachment of lysine 63-linked ubiquitin chains to multiple lysine residues in the Malt1 C-terminus. Through RNAi evidence and the finding that the TRAF6 binding sites in Malt1 are required for NF-kappaB and T cell activation, the presented work strongly supports a critical role for TRAF6 in TCR signaling to NF-kappaB. By reconstitution experiments using Malt1 deficient primary T cells, a crucial function for C-terminal Malt1 ubiquitination in NF-kappaB and T cell activation could be demonstrated. Finally, Malt1-attached ubiquitin chains were shown to provide the interaction surface for recruitment of the regulatory IKK complex component IKKgamma through its ubiquitin-binding domain. Furthermore, binding of ubiquitin chains by IKKgamma was demonstrated to be essential for TCR triggered NF-kB activation. Based on the presented findings, a new model for CBM dependent IKK activation can be suggested: Upon CBM complex formation, TRAF6 associates with the C-terminus of Malt1 and mediates ubiquitination of multiple lysines in the vicinity. IKKgamma is then recruited to ubiquitin-chains attached to Malt1, what could either induce IKK complex activation by induced proximity or by recruitment of an IKK activating kinase. Both mechanisms are not mutually exclusive. Thus, Malt1 ubiquitination represents the missing link between IKK and CBM complexes, thereby directing TCR proximal signals to IKK activation. In addition, a second, ubiquitin-like protein modification was investigated. It was demonstrated that Bcl10 can be a target of sumoylation and that attachment of SUMO occurs specifically at lysine 110. The presented data suggest an interplay between Bcl10 sumoylation and subcellular localization. Sumoylation is enhanced upon nuclear localization of Bcl10 and SUMO fusion to Bcl10 leads to its nuclear import and retention. Furthermore, Bcl10-SUMO fusion results in an enhanced NF-kappaB activation potential compared to wildtype Bcl10. Aberrant nuclear localization of Bcl10 is observed in many MALT lymphomas, which critically depend on constitutive NF-kappaB activation, and correlates with advanced stages. The molecular mechanisms underlying this phenomenon are poorly understood. Thus, sumoylation could represent a novel mechanism to mediate nuclear localization of Bcl10. Additionally, the data suggest that sumoylation of nuclear Bcl10 could influence NF-kappaB activity by a yet uncharacterized mechanism.
Stimulation des T-Zell-Rezeptors (TZR) durch Pathogene führt zur Einleitung einer spezifischen Immunantwort, in deren Koordination T-Zellen eine zentrale Rolle einnehmen. Der Transkriptionsfaktor NF-kappaB reguliert eine Vielzahl von Zielgenen, die für Vermehrung, Differenzierung und Überleben von T-Zellen entscheidend sind, und stellt daher einen wichtigen Faktor für die T-Zell- Aktivierung dar. Auf molekularer Ebene repräsentiert der IkB Kinase (IKK) Komplex die zentrale Schaltstelle der NF-kappaB Signalkaskade. Für T-Zellen wurde gezeigt, dass die Formierung eines Carma1/Bcl10/Malt1 (CBM) Komplexes entscheidend für die Aktivierung des IKK Komplexes ist. Die molekularen Mechanismen, die eine Weiterleitung des Signals vom CBM zum IKK Komplex steuern, sind allerdings bisher weitgehend unverstanden. Im Zuge dieser Doktorarbeit wurde Malt1 als neues Substrat für regulative Ubiquitinierung in der TZR Signalkaskade identifiziert. Es konnte gezeigt werden, dass die Ubiquitin-Ligase TRAF6 (TNF receptor associated factor 6) mit Malt1 assoziiert und sowohl in vitro als auch in vivo die Ubiquitinierung von Malt1 vermitteln kann. Dabei werden mehrere Lysine im C-terminalen Teil von Malt1 mit über Lysin-63 vernetzten Ubiquitin-Ketten modifiziert. Der Befund, dass die TRAF6 Bindungsstellen in Malt1 für NF-kappaB und T-Zell-Aktivierung benötigt werden, weisen auf eine entscheidende Rolle von TRAF6 in der T-Zell-Rezeptor Signalkaskade hin. Rekonstitutionsexperimente mit primären T-Zellen konnten eine essentielle Funktion der C-terminalen Malt1 Ubiquitinierung für NF-kappaB und T-Zell Aktivierung nachweisen. Weiterhin wurde gezeigt, dass die an Malt1 gebundenen Ubiquitin-Ketten eine molekulare Interaktionsoberfläche für die Rekrutierung der regulatorischen IKK Komplex Untereinheit IKKgamma darstellen. Durch Mutation des Ubiquitin-Bindungsmotivs konnte demonstriert werden, dass diese Proteindomäne in IKKgamma für die NF-kappaB Aktivierung in T-Zellen essentiell ist. Basierend auf diesen Ergebnissen kann ein neues Modell für die CBM induzierte IKK Aktivierung vorgeschlagen werden: Nach Bildung des CBM Komplexes assoziiert TRAF6 mit dem C-Terminus von Malt1 und bewirkt die Ubiquitinierung von Lysinen in der Nähe der Bindungsstelle. Die gebildeten Ubiquitin-Ketten führen dann zu einer über das Ubiquitin-Bindungsmotiv in IKKgamma vermittelten Rekrutierung des IKK Komplexes. Dies könnte durch induzierte Nähe die Autoaktivierung des IKK Komplexes oder die Rekrutierung einer IKK aktivierenden Kinase verursachen. Die Ubiquitinierung von Malt1 stellt folglich die bisher unbekannte Verbindung zwischen CBM und IKK Komplexen dar und leitet so vom TZR initiierte Signale an den IKK Komplex weiter. Zusätzlich wurde gezeigt, dass Bcl10 durch Sumoylierung an Lysin 110 modifiziert werden kann. Die präsentierten Daten belegen ein Zusammenspiel von Sumoylierung und intrazellulärer Lokalisation von Bcl10, wobei eine nukleäre Bcl10 Lokalisation die Sumoylierung fördert. Eine Fusion von SUMO und Bcl10 wiederum resultiert in einer Akkumulation des Proteins im Zellkern und zu einer im Vergleich zu Bcl10 verstärkten NF-kappaB Aktivierung. Eine abnormale Lokalisation von Bcl10 im Zellkern wurde in vielen Malt Lymphomen beobachtet, für die konstitutive NF-kappaB Aktivität ist charakteristisch ist. Sumoylierung von Bcl10 könnte daher einen bisher unerkannten Mechanismus repräsentieren, der diese vermittelt, und die NF-kappaB Aktivität über einen noch unbekannten Mechanismus beeinflussen.
