Protein-Affinitäts-Tags sind Peptidsequenzen, welche zur Detektion und Affinitätsaufreinigung von rekombinant hergestellten Proteinen eingesetzt werden. Das Oktapeptid Strep-Tag-II gehört zu den meist verwendeten kurzen Affinitäts-Tags. Eine hochaffine und hochspezifische Erkennung ist zur Detektion und Aufreinigung von Strep-Tag-II-Fusionsproteinen unerlässlich. Spiegelmere sind enantiomere Aptamere, welche durch die Anwendung der Spiegeltechnik auf die in vitro Selektion von Nukleinsäuren gewonnen werden. Die so erhaltenen L-Nukleinsäuren sind durch ihren Aufbau aus L-Monomeren hochgradig stabil und besitzen dennoch die Eigenschaften von Aptameren: die hochaffine und -spezifische Bindung des Zielmoleküls. Innerhalb dieser Arbeit wurden erstmals Spiegelmere gegen das Strep-Tag-II-Affinitätspeptid entwickelt. Diese können zur affinen und spezifischen Detektion, Immobilisierung und Affinitätsaufreinigung von Strep-Tag-II-Fusionsproteinen eingesetzt werden. Innerhalb von sieben Selektionsrunden der in vitro Selektion wurden aus einer kombinatorischen DNA-Bibliothek mit etwa 1015 verschiedenen Molekülen sieben verschiedene Aptamere isoliert, welche alle affin das D-Strep-Tag-II-Peptid binden. Für die konservierten Bereiche der Aptamere wurde eine G-Quadruplexstruktur postuliert, was mit der ermittelten Abhängigkeit der Bindung von Kalium- und Natriumionen kohärent ist. Das Aptamer und das korrespondierende Spiegelmer ST-146 binden das D- bzw. L -Strep-Tag-II-Peptid mit einer Dissoziationskonstante von 370 nM. Die Bindungskonstante einer auf 43 Nukleotide verkürzten Version des ST-146 liegt in derselben Größenordnung. Die für dieses Molekül erhaltenen Kristalle können zu einer röntgenkristallografischen Strukturaufklärung des Strep-Tag-II- Binders führen. Das Spiegelmer ST-146 wurde sowohl zur N-, als auch zur C-terminalen Detektion eines Strep-Tag-II-Fusionsproteins eingesetzt. Die affine und spezifische Erkennung von Strep-Tag-II-Fusionsproteinen durch das Spiegelmer (Kd = 220 - 600 nM) ist stark vom pH-Wert abhängig, wobei ein pH- Bereich von 5 - 7,5 ideal für die Bindung ist. Darüber hinaus konnte die Erkennung von Strep-Tag-II-Fusionsproteinen aus einem Gemisch von Proteinen gezeigt werden. Analog zu ST-146 wurde ein Spiegelmer gegen einen neuen Affinitäts-Tag, den in silico generierten Spiegel-Tag entwickelt. Die Aminosäuresequenz dieses neuen Affinitäts-Tags ist GSHKRNQTIEGR. Das Spiegelmer SP-56 bindet den Spiegel-Tag affin mit einer Dissoziationskonstante von 550 nM. Auch für die Interaktion des SP-56 mit dem Spiegel-Tag wurde eine starke Abhängigkeit vom pH-Wert ermittelt. Locked Nucleic Acids (LNAs) sind Nukleinsäureanalogons, welche häufig zur Stabilisierung von siRNAs und Aptameren eingesetzt werden. Im zweiten Teil der Arbeit wurde erstmals eine komplett aus LNA-Monomeren aufgebaute Doppelhelix kristallisiert und röntgenkristallografisch vermessen. Die Struktur der ersten LNA/LNA- Doppelhelix vervollständigt das Wissen um die strukturellen und molekularen Eigenschaften dieser Nukleinsäureklasse.
Protein affinity tags are peptide sequences, which are used for the detection and affinity purification of recombinant proteins. The octapeptide Strep-Tag- II is among the most commonly used short affinity tags. A sensitive and high specific recognition of Strep-Tag-II fusion proteins is essential for the detection and purification of these proteins. Spiegelmers are enantiomeric aptamers, which are generated by applying the mirror-image technology to the in vitro selection of nucleic acids. These L-nucleic acids are highly stable by means of being composed of L-monomers that are not susceptible to degradation by nucleases. However, they exhibit the qualities of aptamers: binding to the target with high affinity and high specificity. In this work for the first time, Spiegelmers against the affinity tag Strep-tag-II were developed. They can be used for affinity and high specificity detection, immobilization and affinity purification of Strep-tag-II fusion proteins. Seven different aptamers were isolated by Systematic Evolution of Ligands by Exponential Enrichment (SELEX) from a random DNA library of approximately 1015 different types of molecules. Each of them binds to the target molecule D -Strep-tag-II peptide. A G-quadruplex structure is postulated for the conserved sequences of the aptamers. This is coherent with the observed dependence of the binding-affinity on potassium and sodium ions. The aptamer and the corresponding Spiegelmer ST-146 bind with a binding constant of 370 nM to the D- and L-Strep-tag-II peptide, respectively. A binding constant in the same magnitude was obtained for the binding of a truncated 43 nucleotides version of ST-146. The crystals obtained for this molecule might lead to the X-ray crystallographic structure determination of the Strep-tag-II binder. The Spiegelmer ST-146 was employed for the detection of fusion proteins with N- and C-terminal Strep-tag-II, respectively. The specific recognition of Strep- tag-II fusion proteins by ST-146 (Kd = 220 - 600 nM) strongly depends on pH whereas values from pH 5 to 7.5 are ideal. Furthermore, ST-146 was shown to detect Strep-Tag-II fusion proteins from a protein mixture. Similar to ST-146, a Spiegelmer against a new affinity tag, the in silico derived ‘Spiegel-Tag’, was developed. The amino acid sequence of the new tag is GSHKRNQTIEGR. Spiegelmer SP-56 binds the ‘Spiegel-Tag’ with a binding constant of 550 nM. A strong dependence on pH was detected for the interaction of SP-56 with the Spiegel-Tag as well. Locked Nucleic Acids (LNAs) are modified nucleic acids, which are commonly used for protecting siRNAs and aptamers from degradation. In the second part of this work, for the first time, a double helix consisting exclusively of LNA monomers was crystallized and analyzed by X-ray crystallography. The structure of the first LNA/LNA duplex completes the knowledge of the structural and molecular properties of this class of nucleic acids.
