dc.contributor.author
Hahn, Janina
dc.date.accessioned
2018-06-08T00:01:42Z
dc.date.available
2009-05-11T06:11:56.829Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/11353
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-15551
dc.description
Inhalt 1\. Kurzdarstellung 9 2\. Einleitung 11 2.1. Licht als abiotischer
Umweltfaktor 11 2.2. Photosynthese 11 2.2.1. Die Lichtreaktion 12 2.2.2.
Akzessorische Pigmente 13 2.2.3. Phycobiliproteine 14 2.3. Photomorphogenese
17 2.3.1. Photorezeptoren in Pflanzen 18 2.3.2. Pflanzliche Phytochrome 18
2.3.3. Phytochrome anderer Taxa 24 2.3.4. Cyanobakterielles Phytochrom 1, Cph1
25 2.4. Bisherige strukturelle Untersuchungen 28 2.4.1. NMR-Spektroskopie 29
2.4.2. Schwingungsspektroskopische Methoden 30 2.4.3. Untersuchungen mit
Chromophor-Analoga und ortsgerichtete Mutagenese 30 2.4.4.
Röntgenstrukturanalyse 32 2.5. Zielstellung 36 3\. Material und Methoden 40
3.1. Proteinherstellung 40 3.1.1. Plasmide und Stämme 40 3.1.2. Medien 41
3.1.3. Proteinexpression 42 3.1.4. Proteinaufreinigung 44 3.2.
Chromophorherstellung 46 3.2.1. Synechocystis PCC6803 Zellkultur 46 3.2.2. PBS
Isolation und PCB Präparation 47 3.2.3. PCB Präparation aus Spirulina
platensis 48 3.3. Präparation von markiertem α-C-Phycocyanin aus Mastigocladus
laminosus 48 3.3.1. Mastigocladus laminosus Zellkultur 49 3.3.2. PBS Isolation
and Biliprotein-Auftrennung 50 3.3.3. Trennung der C-Phycocyanin α-und
β-Untereinheiten 51 3.4. NMR Probenpräparation 52 3.4.1. holo-Cph1Δ2 52 3.4.2.
Phototransformation 52 3.4.3. α-C-Phycocyanin 53 3.5. NMR-Spektroskopie 53 4\.
Präparation von Cph1Δ2 und α-C-Phycocyanin 55 4.1. Präparation von [2H]-Cph1Δ2
mit [1H]- oder [13C/15N]-PCB 55 4.2. Präparation von α-C-Phycocyanin 57 5\.
Resultate: Protonierungszustand des Chromophors in Pr und Pfr 61 5.1.
α-C-Phycocyanin als Modellsystem 61 5.2. [15N]-HMQC und NOESY von
α-C-Phycocyanin 62 5.3. [15N]-HMQC und [15N]-1D von Cph1Δ2 64 5.4. Diskussion
68 6\. Resultate: Räumliche Struktur des Chromophors in Pr und Pfr 71 6.1.
[13C]-HMQC 71 6.2. 2D-NOESY und 3D-HMQC-NOESY 72 6.3. [13C]-HMQC und 3D-HMQC-
NOESY mit [2H]-Cph1Δ2 + [13C]-PCB + [1H]-Phe/Tyr 79 6.4. Diskussion 82 7\.
Resultate: Chromophor-Dynamik 84 8\. Abschließende Diskussion 87 9\.
Zusammenfassung / Summary 89 10\. Literatur 92 11\. Abbildungen 111 12\.
Tabellen 113 13\. Abkürzungen 114 14\. Publikationsliste 116
dc.description.abstract
Phytochrome sind Photorezeptoren, die das Wachstum und die Entwicklung von
Pflanzen in Abhängigkeit von rotem/dunkelrotem Licht vermitteln. Im Rahmen
dieser Dissertation wurden Lösungs-NMR-Studien an der N-terminalen
photosensorischen Domäne des cyanobakteriellen Phytochroms 1 (Cph1Δ2) aus
Synechocystis PCC6803 und an dessen kovalent gebundenen Chromophor
Phycocyanobilin (PCB) vorgenommen. Mit den Ergebnissen sollten Aussagen zur
Detektion des Lichtsignals durch den Chromophor sowie der Weitergabe des
Signals an das Protein zur Initiation der Signalstransduktionskaskade
getroffen werden. Als erste Resultate konnten nach Aufnahme von [15N]-1D und
-HMQC-Spektren mit [15N]-PCB in deuteriertem Apoprotein und nach Vergleich der
Spektren mit denen geeigneter Modellsubstanzen wie α-C-Phycocyanin die
[15N]-chemischen Verschiebungen der Pyrrol-Stickstoffe des PCB zugeordnet
werden. Es konnte eindeutig bestätigt werden, dass der Chromophor in den
beiden stabilen Photoisomeren Pr und Pfr vollständig protoniert ist. In einem
[13C]-HMQC-Spektrum von [13C]-PCB in deuteriertem Apoprotein konnten lediglich
die Methylgruppen des Chromophors, nicht jedoch die Methinbrücken detektiert
werden. Trotzdem war es nach Aufnahme weiterer 2D-NOESY- und [13C]-editierter
3D-HMQC-NOESY-Spektren möglich, Resonanzen zuzuordnen und die allgemeine
Konformation des Chromophors in der Proteinbindetasche für Pr (ZZZssa) und Pfr
(ZZEssa) zu bestimmen. Die ermittelte Pr-Konformation stimmt mit der des PCB-
Chromophors in der kürzlich veröffentlichten 3D-Kristallstruktur desselben
Proteins (PDB-Code: 2vea) überein. Die Pfr-Konformation eines
Phytochromchromophors war bis zu diesem Zeitpunkt nicht bekannt. Die
spezifische Dynamik des Chromophors in der Proteinbindetasche beeinflusste die
Aufnahme aller Spektren. Sie ergibt sich zum einen aus dem Austausch der
Pyrrol-Protonen des Chromophors mit dem umgebenden Wasser, zum anderen aus
konformationellen Subzuständen (räumliche Beweglichkeit innerhalb einer
spezifischen s\- oder a-Konformation), die der Chromophor einnimmt. Beides
führte koaleszenzbedingt zu einer starken Verbreiterung der Signale. Man kann
davon ausgehen, dass der Chromophor deutlich weniger stark als z.B. in
α-C-Phycocyanin durch ein Wasserstoffbrückennetzwerk positioniert wird. Er ist
dementsprechend sehr beweglich und seine Pyrrol-Protonen sind dem umgebenden
Wasser exponiert. Allerdings nimmt die Beweglichkeit innerhalb des Chromophors
vom D-Ring hin zum A-Ring ab. Mit diesen Ergebnissen sowie unter Einbeziehung
weiterer Untersuchungen kann geschlussfolgert werden, dass keine starke
Konformationsänderung des Chromophors strukturelle Veränderungen im Protein
bewirkt, sondern eine Umordnung des Wasserstoffbrückennetzwerkes als Folge der
Rotation des D-Rings nach Lichtdetektion dabei eine Rolle spielt. Zusammen mit
einem Protonentranslokationsprozess könnten so größere strukturelle
Umordnungen im Protein bewirkt werden, die die Signalweiterleitung
beeinflussen.
de
dc.description.abstract
Phytochromes are photoreceptors that mediate plant growth and development in
response to red/far-red light. In this thesis solution-state NMR studies on
the N-terminal photosensory domain of cyanobacterial phytochrome 1 (Cph1Δ2)
from Synechocystis PCC6803 and its covalently attached phycocyanobilin (PCB)
chromophore were performed. The results should promote a deeper understanding
of the photoconversion mechanism by giving new hints on how an incoming light
signal is detected by the chromophore and how it is passed on to the protein
to initiate the signalling cascade. As first results it was possible to assign
the tetrapyrrole nitrogen chemical shifts of the PCB-chromophore after
recording [15N]-1D and -HMQC spectra of deuterated protein + [15N]-PCB and
comparison of the obtained resonances with those from appropriate model
compounds like α-C-phycocyanin. With these experiments the complete
protonation of the chromophore in the two stable photoisomers Pr and Pfr could
been proven. In [13C]-HMQC spectra using deuterated protein + [13C]-PCB the
chromophore methyl groups but not the methine bridges could be detected. After
recording additional 2D-NOESY and [13C]-edited 3D-HMQC-NOESY spectra it was,
however, possible to assign resonances and to determine the overall
conformation of the chromophore in the binding pocket to be ZZZssa in Pr and
ZZEssa in Pfr. The Pr conformation is consistent with those determined for the
PCB-chromophore in the recently published 3D crystal structure of the same
protein (PDB-code: 2vea). For the Pfr-form of an intact phytochrome no
comparable information was available by that time. The recording of all
spectra was influenced by the specific dynamics of the chromophore in the
binding pocket. It arises on one hand from an exchange of acidic protons in
the molecule with protons from the surrounding solvent, on the other hand from
the existence of certain conformational substates (within one defined s\- or
a-conformation). Both exchange phenomena led to strong broadening of all
signals. It can be deduced that the chromophore in Cph1 is positioned in a
weaker hydrogen bonding network compared to the chromophore in
α-C-phycocyanin. It is thus more flexible and its pyrrole protons are solvent
exposed. The flexibility within the chromophore itself decreases from the
D-ring to the A-ring. These results and those from further experiments allow
the conclusion that the rotation of ring D after detection of the light signal
does not directly affect structural changes in the protein but rather leads to
a rearrangement of the hydrogen bonding pattern in the surrounding protein
binding pocket. Together with a proton translocation process this altered
H-bonding network can provoke an overall structural change in the protein that
promotes signal transduction.
en
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
NMR-Spektroskopie
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::540 Chemie
dc.title
NMR-spektroskopische Untersuchungen zur Struktur und Dynamik des Chromophors
im cyanobakteriellen Phytochrom 1 aus Synechocystis PCC 6803
dc.contributor.contact
janina.hahn@gmx.net
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Hartmut Oschkinat
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Wolfram Saenger
dc.date.accepted
2009-04-16
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000009968-9
dc.title.translated
NMR-spectroscopic investigations on structure and dynamics of the chromophore
in cyanobacterial phytochrome 1 from Synechocystis PCC 6803
en
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000009968
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000005596
dcterms.accessRights.dnb
free
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open access