dc.contributor.author
Manning-Kroeger, Kizzie
dc.date.accessioned
2018-06-07T22:46:58Z
dc.date.available
2009-10-16T09:55:38.602Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/9630
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-13828
dc.description
TABLE OF CONTENTS Summary 1 Zusammenfassung 3 Abbreviations 5 1 Introduction
11 1.1 Osteoarthritis (OA) 11 1.2 Pathophysiology of OA 12 1.3 Role of
catabolic mediators 14 1.3.1 Pro-inflammatory cytokines 14 1.3.2 Matrix
metalleoproteinases 15 1.3.3 Inducible nitric oxide synthase and nitric oxide
15 1.4 Role of anabolic mediators 16 1.4.1 Insulin-like growth factor-1 16
1.4.1.1 Insulin-like growth factor receptor 1 17 1.4.1.2 Insulin-like growth
factor binding proteins 17 1.4.2 Interleukin-4 18 1.5 Characteristics of
cartilage 19 1.5.1 Chondrocytes 20 1.5.2 Mesenchymal stem cells 21 1.5.3
Chondrocyte/MSC markers 23 1.5.3.1 Collagen 23 1.5.3.2 Aggrecan 24 1.5.3.3
SOX9 24 1.5.4 Three-dimensional (3D) cultures 25 1.6 Treatment of OA 26 1.6.1
Medication 26 1.6.2 Surgical options 27 1.6.3 Gene therapy 27 1.6.3.1 Viral
vectors 27 1.6.3.2 Non-viral vectors 28 1.6.3.3 Combined expression of
therapeutic genes 28 1.6.3.4 Stable transfection and co-cultivation of cells
29 1.6.4 Cell therapy 29 1.6.4.1 Autologous cell transplantation 29 1.6.4.2
Autologous conditioned cell transplantion 31 1.7 Canine OA model 32 1.8
Research Aim 33 2 Material and Methods 35 2.1 Material 35 2.1.1 Animal samples
35 2.1.2 Reagents 36 2.1.3 Enzymes 37 2.1.4 Vectors 37 2.1.5 Reagent systems
(Kits) 37 2.1.6 Competent cells 38 2.1.7 Media and antibiotics 38 2.1.8
DNA/protein markers 38 2.1.9 Antibodies 38 2.1.10 Recombinent proteins 39
2.1.11 Buffers/solutions/media components 39 2.1.11.1 Cell culture 39 2.1.11.2
ELISA 40 2.1.11.3 Western blot 40 2.1.12 Plastic-ware/miscellaneous 40 2.1.13
Instruments 41 2.2 Methods 42 2.2.1 Chondrocyte isolation 42 2.2.2 Chondrocyte
monolayer cultures 42 2.2.3 Primer design 42 2.2.4 Conventional RT-PCR 45
2.2.5 Agarose gel electrophoresis 45 2.2.6 Amplification and sequencing of
cIGF-1 and cIL-4 45 2.2.7 Restriction analysis 46 2.2.8 Ligation 46 2.2.9
Transformation and selection with antibiotics 46 2.2.10 Colony screening 47
2.2.11 Isolation of plasmid DNA—Mini-Prep 47 2.2.12 Isolation of plasmid DNA
—Maxi-Prep 47 2.2.13 Transfection 47 2.2.14 Stimulation with pro-inflammatory
cytokines 48 2.2.15 RNA isolation and cDNA synthesis 48 2.2.16 Real-time
quantitative RT-PCR 48 2.2.17 Protein sample preparation 49 2.2.18 IGF-1
immunoassay 49 2.2.19 IL-4 enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) 49 2.2.20
Immunocytochemistry 50 2.2.21 Alcian blue staining 50 2.2.22 NO assay 50
2.2.23 cMSC isolation 50 2.2.24 cMSC monolayer culture 51 2.2.25 Alginate
cultures of cMSCs 51 2.2.26 Histology 52 2.2.27 Fluorescence activated cell
sorting (FACS) 52 2.2.28 Western blot 53 2.2.29 Stable cell line 54 2.2.30
Pellet Cultures 54 2.2.31 Statistical analysis 55 3 Results 56 3.1 Dual
expression of anabolic mediators in canine chondrocytes 56 3.2.4 Cloning of
IGF-1 and IGF-1/IL-4 in pVitro2 56 3.2.5 Expression of IGF-1 and IL-4 proteins
57 3.2.6 Regulation of IGFBP and IGFR1 expression 59 3.2.7 Down-regulation of
pro-inflammatory cytokines and MMPs 60 3.2.8 Down-regulation on iNOS and NO 62
3.2.9 Regenerative potential of IGF-1/IL-4 64 3.2.10 Immunocytochemical
analysis of type II collagen in chondrocytes 66 3.3 Characterisation of cMSCs
68 3.3.4 Isolation and characterization of cMSCs 68 3.3.5 Analysis of non-
differentiated cMSCs 69 3.3.6 Chondrogenic potential of cMSCs 70 3.2.4
Immunocytochemistry of non-differentiated cMSCs 74 3.2.5 Western blot analysis
of cMSC 75 3.2.6 Transfection efficiency 76 3.2.7 Type II collagen expression
study 77 3.4 Co-Culture studies 78 3.4.4 Stable cell line 78 3.4.5 Co-culture
with cMSCs 79 3.4.6 Co-culture with chondrocytes 81 3.4.6.1 Expression of type
II collagen and MMP-13 81 3.4.6.2 Nitrite assay of chondrocyte co-cultures 82
4 Discussion 84 4.1 Dual expression of anabolic mediators in canine
chondrocytes 85 4.2 Characterization and co-expression of anabolic mediators
in cMSCs 90 4.3 Co-cultivation of stably transfected chondrocytes 92 4.4
Future Outlook 96 5 References 98 6 Publications 118 Table Index 120 Figure
Index 121 Acknowledgements 122
dc.description.abstract
Osteoarthritis (OA) is a degenerative as well as inflammatory disease caused
by an imbalance between both catabolic and anabolic factors, affecting both
humans and canines alike. The main catabolic mediators, interleukin (IL) -1β
and tumor necrosis factor α (TNFα), propagate the expression of other
inflammatory mediators that are involved in the degradation of cartilage
matrix proteins and ultimately the loss of cartilage. To combat inflammation
and at the same time stimulate cartilage matrix synthesis, the presence of
both anti-inflammatory and growth factor genes from the same species are
needed. Currently there is no cure for OA. However, regenerative medicine
coupled with gene therapy offers a good alternative in the treatment of
arthritis, with more focus on co-expressing two genes to battle the disease
processes. This study focuses on the effects of the co-expression of insulin-
like growth factor-1 (IGF-1), and the anti-inflammatory cytokine, IL-4, on
cartilage degrading and synthesizing factors in an in vitro canine chondrocyte
and mesenchymal stem cell (MSC) model. Regenerative and anti-inflammatory
effects of IGF-1 and IGF-1/IL-4 in an in-vitro chondrocyte inflammatory model
were analyzed. Co-expression of the transgenes was ascertained by immunoassay.
Pro-inflammatory mediators like IL-1β, TNFα, matrix metalleoproteinases
(MMPs), inducible nitric oxide synthase (iNOS), as well as IGF-binding
proteins (IGFBPs), were analyzed by real-time qRT-PCR. The regeneration of
extracellular matrix proteins was demonstrated on the mRNA and protein levels.
Canine MSCs were isolated and characterized based on morphological as well as
biochemical features utilizing real-time qRT-PCR, FACS, and
immunocytochemistry. The stem cells were transfected with IGF-1/IL-4 to test
the chondrogenic potential of IGF-1 compared to chondrogenic medium containing
TGFβ3. Stable cells with the inflammatory sensitive pCOX2-IL-4 were super-
transfected with pVitro2-IGF-1. Co-cultures with stably transfected cells and
chondrocytes or MSCs were analyzed on their ability to produce extracellular
matrix protein type II collagen and to reduce the expression of the collagen
degradative mediator MMP-13. Results from the chondrocyte pro-inflammatory
model show that pro-inflammatory mediators as well as IGFBPs were down-
regulated in samples transfected with IGF-1/IL-4 to levels comparable to the
non-stimulated, non-transfected control. Also, those samples as well as
samples transfected with IGF-1 alone showed signs of regeneration denoted by
the expression of aggrecan, type II collagen and SOX9. Canine MSCs were shown
to undergo chondrogenesis utilizing chondrogenic medium with TGFβ3 as well as
by transfecting them with IGF-1/IL-4. In both situations, chondrogenesis was
proven by the expression of cartilage markers, namely aggrecan and type II
collagen. Hypertrophy marker, type X collagen, was seen in the 2nd week of
cultivation with TGFβ3. Co-cultures with stably transfected cells also
demonstrated an up-regulation of type II collagen and a down-regulation of
MMP-13 under pro-inflammatory conditions. Overall, this study shows the
ability of the combined expression of IGF-1 and IL 4 to stimulate proteoglycan
and type II collagen synthesis and to down-regulate the degradative effects of
IL-1β and TNFα, in chondrocyte and co-culture models. Co-expression of
therapeutic genes in MSCs offers a dual role in stimulating differentiation of
the stem cells and introducing therapeutic genes into the cells to balance
catabolic effects in OA tissue. The use of multiple genes in chondrocytes or
MSCs could better alleviate the signs and symptoms which are characteristic
for the disease process. This study lays foundation for future studies where
the use of more than one gene of interest would be necessary.
de
dc.description.abstract
Arthritis ist eine degenerative und entzündliche Krankheit, die durch ein
Ungleichgewicht von katabolischen und anabolischen Faktoren verursacht wird.
Sie tritt bei Menschen und Hunden gleichermaßen auf. Die wichtigsten
katabolischen Mediatoren Interleukin (IL)-1β und Tumor Necrosis Faktor α
(TNFα) stimulieren die Expression von weiteren entzündungsfördernden
Mediatoren, die beim Abbau von Knorpelgewebeproteinen mitwirken und
letztendlich zum Verlust von Knorpel führen. Die Natur der Krankheit Arthritis
bedingt, dass für die gleichzeitige Bekämpfung der Entzündung und den
Wiederaufbau des Knorpels sowohl entzündungshemmende als auch
wachstumsfördernde Gene präsent sein müssen. Derzeit gibt es keine
Behandlungsmethode für eine Heilung von Arthritis. Dennoch eröffnet die
regenerative Medizin in Kombination mit der Gentherapie eine vielversprechende
Behandlungsmöglichkeit in Gestalt einer gezielten Co-Expression zweier Gene
zur Bekämpfung der Krankheit. Diese Forschungsarbeit konzentriert sich auf die
Effekte der Co-Expression des Wachstumsfaktors Insulin-like Growth Faktor-1
(IGF-1) und dem entzündungshemmenden Zytokin IL-4 auf knorpelabbauende und
knorpelregenerierende Faktoren in kaninen in vitro Knorpelzellen- und
mesenchymalen Stammzellenmodellen. Analysiert wurden die regenerativen und
entzündungshemmenden Effekte von IGF-1 und IGF-1/IL-4 in einem entzündlichen
in vitro Knorpelzellenmodell. Die Co-Expression der Transgene wurde mit einem
Immuntest überprüft. Die entzündungsfördernden Mediatoren IL-1β, TNFα, Matrix
Metalleoproteinase (MMPs), Inducible Nitric Oxide Synthase (iNOS) sowie IGF-
Binding Proteine (IGFBPs) wurden mit Hilfe von real-time qRT-PCR analysiert.
Die Regeneration von extrazellulären Matrixproteinen wurde auf der mRNA- und
Protein-Expressionsebene demonstriert. Unter Anwendung von real-time qRT-PCR,
FACS und Immunzytochemie wurden mesenchymale Stammzellen (MSCs) von Hunden
isoliert und basierend auf ihren morphologischen und biochemischen
Besonderheiten charakterisiert. Die Stammzellen wurden mit IGF-1/IL-4
transfiziert, um das chondrogenetische Potential von IGF-1 im Vergleich zu
einem chondrogenetischen Medium, das TGFβ3 enthält, zu testen. Stabile, mit
pCOX2-IL-4 transfizierte Zellen wurden mit pVitro2-IGF-1 supertransfiziert.
Co-Kulturen, die stabil transfizierte Zellen und Chondrozyten oder MSCs
enthalten, wurden dahingehend untersucht, ob sie die Fähigkeit besitzen, das
extrazelluläre Matrixprotein Type II Kollagen zu bilden und die Expression des
Kollagen abbauenden Mediators zu reduzieren. Die Ergebnisse des pro-
inflammatorischen Chondrozytenmodells zeigen, dass in Proben, die mit
IGF-1/IL-4 transfiziert worden waren, sowohl entzündungsfördernde Mediatoren
als auch IGFBPs herunter-reguliert waren im Vergleich zu Kontollproben, die
weder stimuliert noch transfiziert worden waren. Darüber hinaus wiesen die mit
IGF-1/IL-4 transfizierten Proben und auch solche, die nur mit IGF-1
transfiziert wurden, Anzeichen für eine Regeneration auf, die sich in der
Expression von Aggrecan, Type II-Kollagen und SOX9 ausdrückten. Im Anschluss
an die Charakterisierung von cMSCs, konnte gezeigt werde, dass sich diese
unter Verwendung eines chondrogenetischen Mediums mit TGFβ3 und des nicht-
viralen Vektors, der IGF-1/IL-4 enthält, einer Chondrogenese unterziehen. In
beiden Situationen wurde eine Chondrogenese durch die Expression von
Knorpelmarkern, namentlich Aggrecan und Type II Kollagen, nachgewiesen. In der
zweiten Woche der Kultivierung mit TGFβ3 wurde der Hypertrophie-Marker Type
X-Kollagen nachgewiesen. Co-Kulturen mit stabil transfizierten Zellen zeigten
zudem eine Hoch-Regulierung von Type II-Kollagen und eine Herunter-Regulierung
von MMP-13 unter pro-inflammatorischen Bedingungen. Insgesamt demonstriert
diese Untersuchung die Eignung der kombinierten Expression von IGF-1 und IL 4
zur Stimulation der Synthese von Proteoglykan und Type II-Kollagen und der
Herunter-Regulierung der degenerierenden Effekte von IL-1β und TNFα in
Chondrozyten- und Co-Kulturmodellen. Die Co-Expression von therapeutischen
Genen in MSCs ermöglicht einerseits die Stimulierung der Ausdifferenzierung
von Stammzellen und andererseits den Ausgleich der katabolischen Effekte der
Arthritis. Durch die Verwendung mehrerer Gene in Chondrozyten oder MSCs könnte
eine bessere Linderung der für den Krankheitsverlauf bei Arthritis
charakteristischen Symptome erreicht werden. Diese Arbeit legt den Grundstein
für zukünftige Forschungsvorhaben, bei denen dann mehr als nur ein Gen von
Interesse untersucht werden müsste.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
Osteoarthritis
dc.subject
cartilage regeneration
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::572 Biochemie
dc.title
Co-Expression of insulin-like growth factor-1 and interleukin-4 in an in vitro
canine chondrocyte and mesenchymal stem cell model
dc.contributor.contact
kskroeger@googlemail.com
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Petra Knaus
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Michael Schmidt
dc.date.accepted
2009-10-12
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000013708-8
dc.title.translated
Ko-Expression von Insulin-like growth factor-1 und interleukin-4 in einem
kaninen chondrozyten und mesenchymalen Stammzell Modell
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000013708
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000011521
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open access