dc.contributor.author
Lange, Vivien
dc.date.accessioned
2018-06-07T21:15:22Z
dc.date.available
2008-07-01T06:22:11.591Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/7610
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-11809
dc.description
Inhaltsverzeichnis 1 Einleitung
___________________________________________________________1 1.1 Funktion und
Aufbau von ABC-Transportern______________________________ 1 1.1.1 Die
integralen Membranproteine der ABC-Transporter _____________________ 4 1.1.2
Die Nukleotid-bindenden Domänen der ABC-Transporter___________________ 5 1.1.3
Die extrazellulären Substrat-Bindeproteine der ABC-Transporter _____________ 9
1.2 Dreidimensionale Strukturen vollständiger ABC-Transporter
_________________ 10 1.3 Zum Mechanismus der ABC-Transportsysteme
____________________________ 14 1.4 Das ABC-Transportsystem ArtMP-J aus G.
stearothermophilus _______________ 15 1.4.1 Der thermophile Organismus G.
stearothermophilus _______________________ 15 1.4.2 Der ABC-Importer ArtMP-J
__________________________________________ 16 1.5 NMR-Spektroskopie in der
Strukturbiologie _______________________________ 17 1.5.1 Lösungs-NMR-
Spektroskopie_________________________________________ 18 1.5.2 Festkörper-
MAS-NMR-Spektroskopie an ABC-Transportern ________________ 18 1.5.3 Selektives
Markieren einzelner Aminosäuren_____________________________ 19 1.6 Motivation
und Zielsetzung ____________________________________________ 20 2 Material und
Methoden _________________________________________________22 2.1 Material
___________________________________________________________ 22 2.1.1
Chemikalien, Enzyme und Materialien __________________________________ 22
2.1.2 Oligonukleotide____________________________________________________ 22
2.1.3 Verwendete Vektoren und Plasmide ____________________________________ 23
2.1.4 Verwendete Detergenzien ____________________________________________ 23
2.2 Escherichia coli (E. coli )-Zellkultur
_____________________________________ 24 2.2.1 Verwendete Bakterienstämme,
Plasmide und Oligonukleotide ________________ 24 2.2.2 Verwendete Medien
_________________________________________________ 25 2.2.3
Anzuchtbedingungen_________________________________________________ 25 2.2.4
Expressionsuntersuchungen ___________________________________________ 25 2.3
Geobacillus stearothermophilus-Zellkultur _________________________________ 26
2.3.1 Medium und Anzuchtbedingungen ______________________________________ 26
2.3.2 Lipidextraktion _____________________________________________________ 26
2.4 Molekularbiologische Methoden _________________________________________ 26
2.4.1 Plasmidpräparation __________________________________________________ 26
2.4.2 Auftrennung von DNA in Agarose-Gelen_________________________________ 26
2.4.3 Modifikation von DNA_______________________________________________ 27
2.4.4 Fällung von DNA ___________________________________________________ 27
2.4.5 Polymerase-Kettenreaktion (PCR) ______________________________________
27 2.4.6 Subklonierung von artP und artM
_______________________________________ 28 2.4.7 Transformation
______________________________________________________ 28 2.5 Expression
rekombinanter Proteine _______________________________________ 28 2.5.1
Expression von unmarkiertem Protein ____________________________________ 28
2.5.2 Expression von 15N- oder 13C-, 15N-markiertem Protein
____________________ 29 2.5.3 Expression von selektiv markiertem ArtMP und
ArtP ________________________ 29 2.6 Reinigung rekombinanter Proteine
________________________________________ 29 2.6.1 Zellaufschluss
_______________________________________________________ 29 2.6.2 Reinigung von
ArtMP aus der Cytoplasmamembran _________________________ 30 2.6.3 Reinigung
von ArtP aus dem Cytosol _____________________________________ 31 2.6.4
Reinigung von ArtJ aus dem Cytosol _____________________________________ 31
2.7 Quantifizierung von Proteinen ___________________________________________
32 2.7.1 Bestimmung der Proteinkonzentration
____________________________________ 32 2.8 Trennung von Proteinen durch
Gelelektrophorese ____________________________ 32 2.8.1 SDS-Polyacrylamid-
Gelelektrophorese ___________________________________ 32 2.8.2 Blau-Native-
Polyacrylamidelektrophorese _________________________________ 32 2.8.3
Protein-Größenstandards_______________________________________________ 33
2.8.4 Färben von SDS-Polyacrylamidgelen mit Coomassie-Blau
____________________ 34 2.9 Spezifischer Nachweis von
Proteinen_______________________________________ 34 2.9.1
Immunoblotting______________________________________________________ 34 2.10
Präparation von Proteoliposomen _________________________________________ 34
2.10.1 Herstellung eines Lipid-OG-Gemisches
___________________________________ 35 2.10.2 Zusammensetzung eines
Rekonstitutionsansatzes____________________________ 35 2.11 Charakterisierung
von ArtMP und seinen Untereinheiten _______________________ 35 2.11.1
Bestimmung der ATPase-Aktivität _______________________________________ 35
2.11.2 Inhibierung der ATPase-Aktivität durch
Vanadat____________________________ 36 2.11.3 Stabilitätsuntersuchungen
gegenüber chaotropen Substanzen __________________ 36 2.11.4 Auftrennung von
ArtMP in seine Untereinheiten ____________________________ 36 2.12 Optimierung
der Detergenzbedingungen für ArtMP___________________________ 37 2.12.1
Untersuchung der Detergenzverträglichkeit mit SDS-PAGE ___________________ 37
2.12.2 Untersuchung der Detergenzverträglichkeit mit Blau-Nativer-PAGE
____________ 37 2.13 Kristallographische Methoden
____________________________________________ 37 2.13.1 Zweidimensionale
Kristallisation von ArtMP_______________________________ 37 2.13.2
Elektronenmikroskopische Aufnahmen von ArtMP-2D-Kristallen ______________ 38
2.13.3 Dreidimensionale Kristallisation von ArtP
_________________________________ 38 2.14 Festkörper-MAS-NMR-Spektroskopie
_____________________________________ 39 2.15 Lösungs-NMR-Spektroskopie
____________________________________________ 39 2.15.1 2D-1H-15N-HSQC-
Experimente _________________________________________ 39 2.15.2 1D-31P-
Experimente __________________________________________________ 40 3 Ergebnisse
_______________________________________________________________42 3.1
Präparation des ABC-Transporters ArtMP für biochemische und
NMRspektroskopische Untersuchungen
____________________________________________________________ 42 3.1.1
Präparation des ABC-Transporters ArtMP ___________________________________ 42
3.1.2 Untersuchung des Einflusses verschiedener Detergenzien und des
Oligomerzustandes von ArtMP durch SDS- und Blau-Native-PAGE
___________________________________ 44 3.1.3 Rekonstitution des ABC-
Transporters ArtMP in Lipide aus G. stearothermophilus ____ 46 3.2
Biochemische Charakterisierung von ArtMP als Vorbereitung für die MASNMR-
Untersuchungen _____________________________________________________________
48 3.2.1 ATPase-Aktivitätsanalysen an ArtMP-J
______________________________________ 48 3.2.2 Inhibition der ATPase-
Aktivität ____________________________________________ 50 3.2.3
Markierungsstrategie für die NMR-Untersuchung von ArtMP: Auftrennung und
Reassemblierung des ABC-Transporters
__________________________________________ 54 3.3 Getrennte Expression und
Präparation der Untereinheiten des ABCTransporters ArtMP
_____________________________________________________________________ 59 3.3.1
Präparation des Membranproteins ArtM______________________________________ 59
3.3.2 Präparation des ABC-Proteins ArtP
_________________________________________ 59 3.4 Kristallisation von ArtMP und
ArtP ___________________________________________ 61 3.4.1 Zweidimensionale
Kristallisation des ABC-Transporters ArtMP___________________ 61 3.4.2
Dreidimensionale Kristallisation von ArtP ____________________________________
66 3.5 Festkörper-MAS-NMR an ArtMP und ArtP
____________________________________ 69 3.5.1 Markierungsstrategie für ArtMP
und ArtP ____________________________________ 70 3.5.2 MAS-NMR-Spektroskopie
am ABC-Protein ArtP ______________________________ 71 3.5.3 MAS-NMR-
Untersuchungen an dem ABC-Transporter ArtMP____________________ 77 3.5.4
Zusammenfassung der MAS-NMR-Messungen an ArtP und ArtMP ________________ 80
3.6 Lösungs-NMR-Untersuchungen am Substrat-Bindeprotein ArtJ
_____________________ 80 3.6.1 NMR-Messung an 15N-ArtJ ohne weitere Zusätze
______________________________ 80 3.6.2 NMR-Messung an 15N-ArtJ nach Substrat-
Zugabe______________________________ 81 3.6.3 NMR-Messung an der 15N-ArtJ
/Arginin-Probe nach Zugabe von ArtMP ____________ 83 3.6.4 NMR-Messung an 15N-
ArtJ unter Zugabe von Arginin, ArtMP und ATP/ MgCl2 _____ 84 3.6.5
Zusammenfassung der NMR-Messungen an ArtJ________________________________ 85 4
Diskussion _________________________________________________________________86
4.1 Präparation und biochemische Untersuchung des ABC-Transporters ArtMP 86
4.1.1 Präparation des ABC-Transporters ArtMP
_____________________________________ 87 4.1.2 Untersuchungen zur ATPase-
Aktivität von ArtMP_______________________________ 88 4.1.3 Auftrennung und
Reassemblierung der Untereinheiten des ArtMP-Komplexes_________ 90 4.1.4
Separate Herstellung der Untereinheiten des ABC-Transporters ArtMP
______________ 91 4.2 Kristallisation des ABC-Transporters ArtMP und des
isolierten ArtP aus G. stearothermophilus
________________________________________________________ 92 4.2.1 2D-
Kristallisation von ArtMP______________________________________________ 92
4.2.2 2D-Kristallisation von ArtMP mit oder ohne ATP-Zugabe – Ausbildung
unterschiedlicher
Kristallformen________________________________________________ 94 4.2.3 3D-
Kristallisation des isolierten ArtP _______________________________________ 97
4.3 Festkörper-MAS-NMR-Messungen an ArtP und ArtMP - im Nukleotid-gebundenen
und -ungebundenen Zustand ________________________________ 98 4.3.1 MAS-NMR-
Messungen an ArtP-3D-Kristallen im Nukleotid-ungebundenen und - gebundenen
Zustand _________________________________________________________ 98 4.3.2
MAS-NMR-Messungen an 2D-Kristallen des ABC-Transporters ArtMP - im Nukleotid-
freien und -gebundenen Zustand _______________________________________ 100
4.3.3 Kombination der PDSD-NMR-Spektren von ArtMP und ArtP
____________________ 101 4.3.4 Zusammenfassung der NMR-Messungen an ArtP und
ArtMP ____________________ 102 4.4 NMR-spektroskopische Untersuchungen an ArtJ
________________________________ 103
Zusammenfassung____________________________________________________________106
Summary ___________________________________________________________________109
Literaturverzeichnis
___________________________________________________________111
Abkürzungsverzeichnis_________________________________________________________121
Veröffentlichungen
____________________________________________________________122
dc.description.abstract
Zusammenfassung ATP- binding cassette (ABC)-Transporter sind ubiquitäre
Membranproteine, die die ATP-Hydrolyse mit der Translokation verschiedenster
Substrate über Membranen koppeln. Ein Verständnis des komplexen
Transportvorgangs setzt Kenntnisse zu Funktion und Struktur der ABC-
Transporter voraus. In der vorliegenden Dissertation wurden erste strukturelle
Untersuchungen mit der NMR-Spektroskopie an dem ABC-Transportsystem ArtMP-J
aus G. stearothermophilus durchgeführt, die die Grundlage für weiterführende
NMR-Strukturstudien schaffen und so langfristig zur Aufklärung der molekularen
Mechanismen dieser Transporter beitragen. ArtMP und das isolierte ArtP-Protein
wurden mit Festkörper-magic angle spinning (MAS)-NMR strukturell untersucht.
Beide wurden für diese Studien jeweils im Nukleotid-gebundenen oder -freien
Zustand hergestellt und selektiv mit 13C-, 15N-Prolin, -Tyrosin und -Threonin
markiert. Über diese markierten Aminosäuren ließen sich Effekte der Nukleotid-
Bindung in ArtMP und ArtP verfolgen. Das lösliche ABC-Protein ArtP wurde
separat präpariert und mit und ohne ATP-Zugabe 3D-kristallisiert. Die NMR-
Spektren der 3D-Kristalle wiesen eine gute Signalauflösung auf und zeigten den
Erfolg der selektiven 13C-, 15N-Markierung ausgewählter Aminosäuren des
Proteins. Es wurden zwei Aminosäure-Paare sequentiell zugeordnet:
Tyrosin-133/Prolin-134 und Prolin-134/Threonin-164 sowie zusätzlich das
Tyrosin-213. In den Spektren vom Nukleotid-gebundenen ArtP war eine
Signalaufspaltung von Tyrosin-213 zu beobachten. ArtMP befand sich für die
NMR-spektroskopischen Studien homogen angeordnet in seiner natürlichen
Lipidumgebung, indem der Proteinkomplex in extrahierte Lipiden von G.
stearothermophilus 2D-kristallisiert wurde. Bei der 2D-Kristallisation von
ArtMP mit und ohne Nukleotid entstanden verschiedene Formen von 2D-Kristallen,
die jeweils gut aufgelöste NMR-Spektren ergaben. Über den Vergleich der ArtMP-
mit den ArtP-Spektren wurden die erhaltenen Zuordnungen übertragen und die
Signale, die zu den TMDs gehören, identifiziert. An dem zugehörigen Substrat-
Bindeprotein ArtJ wurde mittels der Lösungs-NMR-Spektroskopie die
Wechselwirkungen zwischen Protein und Transporter sowie Protein und Substrat
untersucht. Des Weiteren ermöglichten die NMR-Messungen an ArtJ die
Betrachtung der Signalübertragung zwischen den einzelnen Untereinheiten bzw.
Komponenten des ABC-Transportsystems.
de
dc.description.abstract
Summary ATP-binding cassette (ABC) transporters are ubiquitous membrane
proteins that couple the energy of ATP hydrolysis to the translocation of
diverse substrates across biological membranes. The understanding of the
complex translocation mechanism requires the knowledge of both the function
and the structure of the ABC-transport systems. This thesis describes first
structural studies by NMR spectroscopy of the ABC-import system ArtMP-J from
the thermophilic organism G. stearothermophilus in order to gain structural
insights into the molecular mechanisms and interactions of ABC transporters.
ArtMP and isolated ArtP were structurally analysed by solid-state magic-angle-
spinning (MAS) NMR. In recent years solid-state MAS NMR has emerged as a
method for structural studies of large proteins and membrane proteins. Solid-
state NMR experiments on membrane proteins require reconstitution of purified
and isotopically labelled proteins in a membrane environment at high density
or three-dimensional crystals of soluble proteins. For these NMR-studies both
ArtMP and ArtP were prepared in nucleotide-bound or unbound state and
selectively isotopically 13C-, 15N-labelled with the amino acids proline,
tyrosine and threonine. Therefore a few sequential pairs of labelled amino
acids occurred, which were used to monitor structural changes in the proteins
and could be assigned. ArtMP was reconstituted in its native environment using
lipids extracted from the host strain G. stearothermophilus. The 2D
crystallization with and without ATP resulted in two different shapes of ArtMP
2D crystals when studied by electron microscopy: in the absence of the
nucleotide large multilayered structures were formed whereas with ATP the 2D
crystals had the shape of vesicles with large regions of lattice-like patches.
The solid-state NMR-measurements of these ArtMP-crystals generated spectra
with good resolution whereas best spectra were obtained for the nucleotide-
bound ArtMP. Additionally, the isolated ArtP domain was prepared and 3D
crystallized for solid-state MAS NMR-experiments. The recorded NMR spectra of
the ArtP 3D crystals were of high quality with good resolution. Taking
advantage of the reduced number of labelled residues two pairs of amino acids
were sequence-specifically assigned: Y133/P134 and P163/T164 and furthermore
Y213. In the spectra of ArtP in the nucleotide-bound state interesting
chemical shift changes and doubling of signals was observed. Structural
studies were also performed on the substrate-binding protein, ArtJ, using
solution-state NMR. These NMR measurements gained initial insight into the
dynamics and interactions of ArtJ with the transported substrate and the ABC
transporter. In the future a sequential assignment of the protein enables the
determination of amino acids and regions in the protein, which are involved in
the protein-protein or protein-ligand contacts.
en
dc.format.extent
IV, 123 S.
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
ABC-Transporter
dc.subject
Membranproteine
dc.subject
2D-Kristallisation
dc.subject
3D-Kristallisation
dc.subject
Festkörper-MAS-NMR
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::540 Chemie
dc.title
NMR-spektroskopische Untersuchungen an dem ABC-Transporter ArtMP-J aus G.
stearothermophilus
dc.contributor.contact
vlange@fmp-berlin.de
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. H. Oschkinat
dc.contributor.furtherReferee
PD Dr. C. Freund
dc.date.accepted
2008-05-22
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000003931-6
dc.title.translated
NMR spectroscopical investigations on the ABC-transporter ArtMP-J from G.
stearothermophilus
en
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000003931
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000003855
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open access