dc.contributor.author
Barone, Matthias
dc.date.accessioned
2018-06-07T20:26:37Z
dc.date.available
2017-07-06T13:05:37.132Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/6848
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-11047
dc.description
I. Introduction and Literature Survey 1\. The lack of metastasis-related
targets 1.1. Metastasis as terminal illness 1.2. Targeting the traction
control 2\. The fibrous polymer actin 2.1. Fast growing F-actin 2.2.
Regulation of actin-based protrusions 2.2.1. Branching by Arp2/3 2.2.2.
Coupling branching and elongation activities 2.3. Ena/VASP orchestrates the
interactome 3\. Ena/VASP EVH1 as druggable element 3.1. Ena/VASP function 3.2.
EVH1 epitope binds FPxxP 4\. Proline-rich motifs 4.1. Proline-rich segments
4.2. Recognition modules of proline-rich segments 5\. Previous attempts to
address EVH1 5.1. Mimicry of the epitope 5.2. Mimicking proline-rich motifs
6\. Ena/VASP as possible antimetastatic target 6.1. Architecture of ProMs 6.2.
The working hypothesis II. Materials and Methods 7\. Materials 7.1. Chemicals
7.2. Equipment 8\. Methods 8.1. Protein preparation 8.1.1. Vector construction
8.1.2. Protein expression and purification 8.2. Scaffold and peptide
preparation 8.3. Macromolecular crystallography 8.3.1. General workflow 8.3.2.
Optimization of crystal quality 8.3.3. Data processing and graphics 8.4.
Affinity measurement 8.4.1. Fluorescence titration 8.4.2. Isothermal
calorimetry 8.5. 1H-15N-HSQC-measurements 8.6. SPOT array substitution III.
Results 9\. Crystal structures and affinity measurements 9.1. Statistics 9.2.
Inhibitor optimization 9.2.1. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PPPP–OH 9.2.2. ENAH
EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-1]–OH 9.2.3. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-1]–NH2
9.2.4. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe][ProM-1][ProM-1]–OH 9.2.5. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-
Phe][ProM-2][ProM-1]–OH 9.2.6. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-3]–OH
9.2.7. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-4]–OH 9.2.8. ENAH EVH1,
Ac–WPPPPTEDEL–NH2 9.2.9. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PPPPTEDEL–NH2 9.2.10. ENAH
EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-1]TEDEL–NH2 9.2.11. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-
Phe][ProM-2][ProM-12]–OH 9.2.12. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-12]–OMe
9.2.13. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-9]–OH 9.2.14. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-
Phe][ProM-2][ProM-9]–OH 9.2.15. ENAH EVH1, Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-13]–OEt
9.2.16. EVL EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-9]–OH 10.Additional
biochemical/biophysical results 10.1. SPOT array substitution 10.2. 1H-15N-
HSQC experiments IV. Discussion 11.Shortening wt to an uncharged inhibitor
11.1. The parent ligand 11.2. Replacement of 1Phe 11.3. Replacement of 4PP
11.4. Replacement of 2PP 12.Increasing the affinity further 12.1. Optimization
of 3Pro 12.2. C-terminal epitope of ActA-derived PRS 12.2.1. The crystal
structure of TEDEL-elongated ligands 12.2.2. Previously reported interaction
site on VASP EVH1 12.2.3. Previously reported interaction site on Homer EVH1
12.3. Optimization of 4Pro by mimicking 9Glu 12.4. Optimization of 4Pro by
mimicking 10Leu 13.Packing artifacts 13.1. Binding pocket caused by Arg81
13.2. Ena/VASP EVH1 has a putative second binding site 14.Additional hot spots
V. Conclusion 15.ProM scaffolds access novel antimetastatic target? VI.
Acknowledgment VII.Supplementary Informations 16.Affinity measurements 16.1.
Choice of measure of affinity 16.1.1. Affinity measurement 16.2. Affinity
tables 16.3. Epitopes contribute to deltaG additively 17.Purification
protocols 17.1. Expression protocol of Ena/VASP EVH1 domains 17.2.
Purification protocol of ENAH EVH1 17.3. Purification protocol of EVL EVH1
dAT/tail 18.ENAH EVH1 complex structures 18.1. Ac–[2-Cl-Phe]PPPP–OH 18.2.
Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-1]–OH 18.3. Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-1]–NH2 18.4. Ac–[2-Cl-
Phe][ProM-1][ProM-1]–OH 18.5. Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-1]–OH 18.6. Ac–[2-Cl-
Phe][ProM-2][ProM-3]–OH 18.7. Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-4]–OH 18.8.
Ac–WPPPPTEDEL–NH2 18.9. Ac–[2-Cl-Phe]PPPPTEDEL–NH2 18.10.Ac–[2-Cl-
Phe]PP[ProM-1]TEDEL–NH2 18.11.Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-12]–OMe 18.12.Ac–[2
-Cl-Phe][ProM-2][ProM-12]–OH 18.13.Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-9]–OH 18.14.Ac–[2-Cl-
Phe][ProM-2][ProM-9]–OH 18.15.Ac–[2-Cl-Phe][ProM-2][ProM-13]–OEt 19.Attempts
to crystallize EVL/VASP EVH1 19.1. EVL EVH1, Ac–[2-Cl-Phe]PP[ProM-9]–OH 19.2.
VASP EVH1 constructs 20.1H-15N-HSQC resonance peak tables 21.Index of
abbreviations
dc.description.abstract
Metastasis is the major lethal attribute of cancer. However, the lack of
antimetastatic drugs and the limited progress of metastasis-directed drug
development efforts make new approaches essential in drug design. Despite
being a marker of breast carcinogenesis and signature of invasive cancer
progression, potent inhibitors against the actin regulatory protein family
Ena/VASP remained elusive. Recently, we showed that interfering with Ena/VASP
causes significant reduction in breast cancer cell invasion. We designed and
evaluated diproline mimicking scaffolds, coined ProM, to inhibit the proline-
mediated protein-protein interaction of the Ena/VASP EVH1 domains with a non-
toxic, selective and cell-membrane-permeable inhibitor. However, the moderate
affinity of the initial inhibitor will restrict the validation in future
animal studies. In this work, we optimize the affinity of this inhibitor by
using structural informations of 16 Ena/VASP EVH1 crystal structures. We solve
the binding mode of the elongated peptide of the actin assembly-inducing
protein (ActA) of Listeria monocytogenes. We mimic the found interactions of
ActA with new scaffolds and develop a 734 Da compound with nanomolar affinity,
which serves as novel starting point for in vivo studies. We conserved the
structural simplicity, low-molecular weight and pharmacological properties of
the inhibitor while drastically increasing the affinity of the scaffolds
against the flat protein surface. The herein presented structure-affinity
relationship study demonstrates the powerful modular architecture of our
scaffold toolbox and paves the way for future in vivo studies. Structure-
optimized ProM scaffolds might represent a novel class of antimetastatic drugs
acting at the very end of converging receptor kinase signaling and integrin
pathways.
de
dc.description.abstract
Metastasen sind die häufigste Todesursache der Krebserkrankung. Neue
Arzneimittel erreichen jedoch häufig nicht ausreichende Steigerung der
Überlebensrate von Patienten und die medikamentösen Tumortherapien zeigen nur
geringen Erfolg. Es gibt daher grossen Bedarf an neuen Ansätzen. Obwohl die
Aktin-Regulatoren der Ena/VASP Proteinfamilie als Marker für Karzinogenese der
Brust und als Signatur invasiver Krebsentwicklung gelten, gab es bislang keine
zellgängigen Inhibitoren gegen diese Proteine. Wir haben kürzlich gezeigt,
dass eine Interferenz mit Ena/VASP die Invasivität von Brustkrebszellen
signifikant reduziert. Dazu haben wir di-Prolin-Mimetika entwickelt, genannt
ProM, welche die prolinvermittelte Protein-Protein Interaktion der Ena/VASP
EVH1-Domäne nachahmen. Aufbauend auf der Verknüpfung zweier ProM Bausteine
konnten wir einen nicht toxischen, selektiven und zellgängingen Inhibitor
entwickeln, der Ena/VASP erfolgreich von seinen natürlichen
Interaktionspartnern verdrängt. Die moderate Bindungsstärke dieses Inhibitors
wird jedoch die Validierung in zukünftigen Tierexperimenten erschweren. In
dieser Arbeit wird die Affinität des Inhibitors mit Hilfe struktureller
Informationen aus 16 Ena/VASP-EVH1 Kristallstrukturen optimiert. Dabei
entschlüsseln wir den Bindungsmodus der C-terminal verlängerten Bindesequenz
des Proteins ActA von Listeria monocytogenes. Wir ahmen die gefundenen
Interaktionen von ActA mit neuen ProM Bausteinen nach und entwickeln einen 734
Da Inhibitor, der als neuer Ausgangspunkt für in vivo Studien verwendet werden
kann. Wir konservierten dabei die strukturelle Einfachheit, das kleine
Molekulargewicht und pharmakologischen Eigenschaften des Inhibitors und
erhöhten die Bindungsstärke der ProM Scaffolds gegen ein flaches Epitop
drastisch. Die hier präsentierte Struktur-Affinitäts-Beziehung demonstriert
die Vorteile der modular aufgebauten ProM Moleküle und ebnet den Weg für
zukünftige in vivo Studien. Die strukturoptimierten ProMs könnten eine neue
Klasse von Medikamenten in der Tumortherapie darstellen, die ihre Wirkung am
Ende der Rezeptor Tyrosinkinasen und Integrin Signalkaskaden entfalten.
de
dc.format.extent
VIII, 203 Seiten
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
protein crystallography
dc.subject
protein-protein interaction
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::572 Biochemie
dc.title
Structure-optimized ProM scaffolds address Ena/VASP as a possible
antimetastatic target
dc.contributor.contact
matthias.barone@me.com
dc.contributor.firstReferee
Dr. Ronald Kühne
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Udo Heinemann
dc.date.accepted
2017-06-26
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000105023-4
dc.title.translated
Strukturoptimierte ProM Scaffolds adressieren Ena/VASP als ein potentielles
antimetastatisches Target
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000105023
refubium.note.author
On page 91, the binding affinities of single substituted 13-mers to ENAH EVH1
are not found in Tab. 9.8 but in the SI Tab 16.2 on page 141.
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000021776
dcterms.accessRights.dnb
free
dcterms.accessRights.openaire
open access