dc.contributor.author
Nandy, Constanze
dc.date.accessioned
2018-06-07T15:05:16Z
dc.date.available
2015-07-20T09:33:22.858Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/547
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-4749
dc.description
1 Introduction 1 1.1 Embryonic development 1 1.1.1 Early embryonic development
1 1.1.2 Gastrulation 2 1.2 Mesoderm patterning 3 1.2.1 Segmentation 4 1.3
Development of endodermal structures 6 1.3.1 Signaling network in embryonic
development 7 1.4 Ectoderm development 7 1.4.1 Neural crest development 7
1.4.2 Role of the ventral ectodermal ridge in caudal end development 9 1.5
Marker genes-of-interest and their expression profile in the caudal end 10
1.5.1 The caudal end at 9.0 dpc 10 1.5.2 Homeodomain transcriptionfactor MIXL1
12 1.5.3 Homeodomain transcription factor Tlx2 13 1.5.4 Peptide hormone
Secretin 13 1.5.5 Paired box transcription factor Pax3 14 1.6 Lineage tracing
in the mouse embryo 14 2 Results 17 2.1 Development of mesoderm in the caudal
end of the mouse embryo 17 2.2 Generating a Lineage Tracing Construct for in
vivo analysis 17 2.2.1 Dre versus Cre recombinase 20 2.3 Lineage tracing
driven by the Mixl1 homeodomain transcription factor 22 2.4 Lineage tracing
driven by the Tlx2 homeodomain transcription factor 25 2.5 Lineage tracing
driven by the peptide hormone Secretin (Sct) 29 2.6 Lineage tracing driven by
the transcription factor Pax3 31 2.7 Transcriptome analysis of caudal end
subregions 35 2.7.1 Analysis of canonical pathways in subregions of the caudal
end 36 2.7.2 Clustering of differentially expressed genes from RNA sequencing
analysis 40 2.7.3 Analysis of clustered genes for biological processes in
subregions of the caudal end 40 2.7.4 Markers for paraxial and lateral
mesoderm are expressed in the Mixl1 population 46 2.7.5 Noto expression in
Mixl1 expressing cells in the caudal end 49 2.7.6 Foxa2/-T expressing cells
representing endoderm 49 2.7.7 Genes expressed in Tlx2 expressing cells are
involved in endoderm development 50 2.7.8 Genes expressed in Pax3 expressing
cells are involved in neural crest development 53 3 Discussion 57 3.1 Tlx2
descendants contribute to hindgut development 57 3.1.1 Involvement of Tlx2
daughter cells in endoderm development 58 3.1.2 Tlx2 daughter cells do not
contribute to the development of the enteric nervous system 61 3.2 Noto
expression in Mixl expressing cells 62 3.3 Mixl1 expressing cells contribute
to development of paraxial and lateral mesoderm 62 3.4 Mixl1 expressing cells
and their contribution to development 64 3.5 Pax3 descendants contribute to
neural crest development 65 3.5.1 Pax3 subdomain: Origin of neural crest
precursors? 67 3.6 Characteristics of Sct expressing cells 69 3.7 Conclusions
69 3.7.1 Outlook 70 4 Methods 71 4.1 DNA work and cloning 71 4.1.1 Polymerase
Chain Reaction (PCR) 71 4.1.2 Cloning vectors and bacterial strains 71 4.1.3
Lineage tracing construct 71 4.1.4 RED/ET recombineering 72 4.1.5 Mini-prep of
BAC DNA 72 4.2 Cell culture 73 4.2.1 Culturing embryonic stem cells 73 4.2.2
Electroporation of ES cells 73 4.2.3 Picking of ES cell clones 73 4.2.4
Induction of ES cells with 4-OH tamoxifen 73 4.2.5 X-Gal staining of ES cells
74 4.2.6 Genotyping ES cells by Southern blotting 74 4.2.7 Tetraploid
complementation assay using transgenic ES cells 75 4.3 Mouse work 75 4.3.1
Tamoxifen administration 75 4.4 Histology 75 4.4.1 Imaging of fluorescent
embryos 75 4.4.2 WISH (Whole-mount in situ hybridization) 76 4.4.3 X-Gal
staining of whole mount embryos 77 4.4.4 Paraffin embedding and sectioning of
embryos 77 4.4.5 Counterstaining of sections with Eosin 77 4.5 FACS -
Fluorescence activated cell sorting 78 4.5.1 Homogenization of caudal ends for
FACS 78 4.5.2 Cell sorting 78 4.6 RNA work 78 4.6.1 Isolation of RNA 78 4.6.2
RNA library preparation 79 4.6.3 RNA sequencing 82 4.6.4 Bioinformatic data
analysis 82 4.7 BAC clones used for creating transgenic ES cells and embryos
83 4.8 Buffers, solutions and media 83 5 Summary 87 6 Zusammenfassung 89
References 95 7 Supplementary 111
dc.description.abstract
The caudal end of the midgestational mouse embryo comprises several important
subdomains which are essential for morphogenesis and tissue maintenance during
trunk and tail elongation. This study investigates different cellular
subdomains from the caudal ends of 9.0 and 10.5 days post coitum (dpc) murine
embryos. Each of these subgroups is characterized by the specific expression
of a different marker gene. Four different marker genes were chosen for this
study: Tlx2, Mixl1, Sct and Pax3. Lineage tracing was performed to reveal the
progeny of each subgroup. In order to compare the localization of subgroup
descendants at these two distinct time-points during embryonic development, an
inducible construct was employed. Two different reporter genes were
genetically integrated into ES cells for the generation of reporter embryos.
For lineage tracing analysis, a lacZ gene was integrated in the ROSA26R locus,
able to be triggered by tamoxifen induction. For RNA-Seq analysis, a Venus
fluorescent protein under control of the marker gene promotor was used for
cell sorting. The lineage tracing assay revealed Mixl1 expressing cells in
lateral and paraxial mesoderm, and in the posterior notochord. Tlx2 expressing
progeny were found in the hindgut, and progeny of Sct expressing cells were
spotted throughout the mesoderm. Descendants of Pax3 expressing cells were
located in the neural tube and later in ganglion structures. The
transcriptomes of each cellular subgroup were examined using RNA-Seq. Data
from the lineage tracing approach was integrated in order to find upregulated
genes for directed processes within each subgroup of sorted cells.
Transcriptome analysis of the Mixl1 subgroup indicated upregulation of Noto,
which is involved in notochord development. Additionally, genes involved in
processes characteristic for mesoderm were found. Thus Mixl1 expressing cells
could contain two different subgroups or could be precursors for different
domains of mesoderm. Since progeny of Tlx2 expressing cells were found in the
hindgut, genes indicating participation in endoderm development were examined
and genes coding for integral membrane proteins were identified. My
observation that progeny from Tlx2 expressing cells contribute to hindgut
development has not been described before. Previous research detailed hindgut
formation as a process expanding in a rostral-to-caudal direction. Here I
depict the novel finding that a second origin for the hindgut exists, derived
from cells from the caudal end. For the subdomain of Pax3 expressing cells,
neural crest cell genes were found to be upregulated. This novel finding shows
that neural crest cells arise from the mesodermal Pax3 expressing region in
the caudal end to contribute to NC development. Transcriptome analysis of
cells sorted for Sct expression identifies this subdomain as a component of
the mesoderm, without any additional functional distinctions. Overall, the
work contained in this thesis uses an innovative genetic approach to provide
functional information about various cellular subpopulations within the
developing mouse caudal end. Presented results confirm not only common
correlations but give novel insights into so far unknown processes of
embryonic mouse development.
de
dc.description.abstract
Das kaudale Ende des 9.0 Tage alten Mausembryos besteht aus unterschiedlichen
Teilbereichen, welche wichtige Funktionen während der Rumpf- und
Schwanzentwicklung inne haben. In dieser Arbeit wurden mehrere Untergruppen
des kaudalen Endes von 9 und 10 Tage alten Mausembryonen untersucht. Jede
dieser Untergruppen ist durch die spezifische Expression eines Gens
charakterisiert. Für diese Arbeit wurden 4 unterschiedliche Markergene, Mixl1,
Tlx2, Sct und Pax3 augewählt. Eine Zellstammbaumanalyse, bei welcher eine per
Tamoxifen induzierbare Kassette verwendet wurde, ermöglichte Untersuchungen zu
ausgewählten Zeitpunkten während der Embryonalentwicklung. Zu diesem Zweck
wurden zwei unterschiedliche Reportergene verwendet. Das Venusreportergen,
welches vom Promotor des Markergens kontrolliert wurde, sowie ein lacZ-Gen.
Das lacZ-Gen, war in den ROSA26R Genlokus integriert und wurde somit nur nach
erfolgter Applikation von Tamoxifen durch Rekombinase vermitteltes
Ausschneiden einer Stoppkassette exprimiert. Venus exprimierende Zellen wurden
zusätzlich mittels fluoreszenzbasierter Durchflusszytometrie sortiert und
anschließend für RNA-Sequenzierung verwendet. Die Zellstammbaumanalyse zeigte
die Lokalisation der Tochterzellen der unterschiedlichen durch die Markergene
charakterisierten Subdomänen. Im lateralen und paraxialen Mesoderm, sowie im
Notochord fanden sich Abkömmlinge der Mixl1 exprimierenden Zellen.
Tochterzellen von Tlx2 exprimierenden Zellen wurden im Hinterdarm
nachgewiesen. Nachkommen von Sct exprimierenden Zellen wurden verstreut im
Mesoderm identifiziert. Nachfahren von Pax3 exprimierenden Zellen wurden im
Neuralrohr, sowie zu einem späteren Zeitpunkt der Embryonalentwicklung in
Nervenknoten gefunden. Die Transkriptomanalyse von sortierten Zellen mit Mixl1
Expression zeigte das Gen Noto in diesen Zellen erhöht exprimiert. Außerdem
waren verstärkt exprimierte Gene enthalten, welche in Entwicklungsprozesse
involviert sind, die charakteristisch für das Mesoderm sind. Folglich könnten
die Mixl1 exprimierenden Zellen aus zwei unterschiedlichen Untergruppen
zusammengesetzt sein, oder Vorläufer unterschiedlicher Mesodermdomänen
enthalten. Nachkommen Tlx2 exprimierender Zellen wurden im Hinterdarm
gefunden. In der Transkriptomanalysi konnten Gene die zu Entwicklung des
Endeoderms beitragen und insbesondere für transmembrane Proteine kodierende
Gene identifiziert werden. Das Zellen, insbesondere Tlx2 exprimierende Zellen
aus dem kaudalen Ende des Mausembryos zur Entwicklung des Hinterdarmes
beitragen, ist bisher noch nicht beschrieben worden. Nach bisheriger
Auffassung wächst der Hinterdarm vom anterioren in Richtung des Kaudalen
Endes. Die Ergebnisse dieser Arbeit legen nahe, dass es zwei Richtungen gibt
aus denen Zellen zur Hinterdarmentwicklung beitragen. Bei Zellen aus der
Subregion des kaudalen Endes mit Pax3 Expression konnte gezeigt werden, dass
diese Zellen Gene exprimieren, die in die Entwicklung von Neuralleistenzellen
involviert sind. Diese neuen Ergebnisse zeigen, dass sich auch aus der
mesodermalen Expressionsdomäne von Pax3 Neuralleistenzellen heranbilden. Die
Analyse des Transcriptomes von Sct exprimierenden Zellen wies diese Domäne als
Teil des Mesoderm, aber ohne eine für diese Domäne besondere Funktion aus. In
der vorliegenden Forschungsarbeit wurde ein innovativer Ansatz gewählt, um
neue Erkenntnisse über funktionelle Zusammenhänge in zellulären
Subpopulationen des kaudalen Endes der Maus zu gewinnen. Die hier vorgelegten
Ergebnisse untermauern einerseits bestehende Erkenntnisse, zeigen aber vor
allem bisher unbekannte, neue Zusammenhänge der Embryonalentwicklung der Maus
auf.
en
dc.format.extent
XI, 130 S.
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
lineage tracing
dc.subject
transcriptome analysis
dc.subject
hindgut development
dc.subject
notochord development
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.title
Molecular characterization of cellular subgroups in the caudal end of the
mouse embryo
dc.contributor.contact
constanze@nandy.de
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Bernhard G. Herrmann
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Stephan Sigrist
dc.date.accepted
2015-06-22
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000099745-4
dc.title.translated
Molekulare Charakterisierung zellulärer Subgruppen in der Schwanzknospe der
Maus
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000099745
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000017401
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free
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open access