dc.contributor.author
Peng, Jun
dc.date.accessioned
2018-06-07T18:13:31Z
dc.date.available
2010-05-11T09:32:32.728Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/4794
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-8993
dc.description.abstract
Background - Under current heart failure treatment, the prognosis of dilated
cardiomyopathy (DCM) is poor, urging for alternative therapeutic strategies.
There is growing experimental support for the application of cellular
transplantation as a strategy to improve myocardial function. Mesenchymal stem
cells (MSC) have immunomodulatory features and have been experimentally shown
to be attractive tools for the treatment of myocardial infarction and
cardiomyopathies. Aim - The aim of the present study was to investigate
whether MSC are potential candidates for the treatment of CVB3-induced
inflammatory DCM. In detail, the study focuses on analyzing whether
coxsackievirus B3 (CVB3) replication can take place in MSC and whether CVB3
infection can influence MSC viability. In addition, the study investigates
whether and how MSC, independently of their immunomodulatory effects, i.e. in
the absence of immunoregulatory cells, can have a direct protective effect on
CVB3-induced cardiomyocyte apoptosis and oxidative stress.
Methods/experimental design - To study the potential infectivity of MSC, the
expression of the coxsackievirus-adenovirus receptor (CAR) and the co-receptor
decay accelerating factor (DAF), both necessary for CVB3 uptake, on MSC was
evaluated by FACS analysis. Chinese Hamster Ovarian (CHO) cells overexpressing
CAR and HL-1 cells, since cardiomyocytes are the target cells of CVB3, were
used as positive controls. CHO lacking CAR and cardiac fibroblasts, known to
express only low CAR, were used as negative controls. Next, MSC were infected
with CVB3 at a multiplicity of infection (m.o.i.) of 5 for 1h. Cell viability
was determined 4h, 12h, 24h, and 48h after CVB3 infection via a MTS assay. To
assess whether viral replication and viral progeny release take place, the
same timeframe experiment was performed and cells and medium were collected to
determine CVB3 RNA copy number and plaque formation, respectively. All
experiments were performed in parallel with HL-1 and cardiac fibroblasts. To
determine the effect of MSC on CVB3-infected HL-1, unlabeled, DiO-labeled or
Dil-labeled MSC were cocultured with CVB3-infected HL-1 for RNA purposes,
apoptosis (Annexin V/7AAD FACS) and oxidative stress (DCF FACS) analysis,
respectively. To investigate whether the MSC-mediated effects are nitric oxide
(NO)-dependent, MSC were pretreated with the iNOS inhibitor N-omega-nitro-
arginine methyl ester (L-NAME). To determine whether MSC need the presence of
IFN- or cell contact with HL-1, culture in the presence of anti-murine IFN-
antibody or on a transwell membrane was performed, respectively. To determine
whether cell contact per se leads to an improvement in the condition of the
HL-1 cells, cocultures of HL-1 cells with cardiac fibroblasts instead of MSC
were performed. Medium of coculture experiments was collected to analyze viral
titer via plaque formation on HeLa cells. Results - Compared to CHO-CAR+ and
HL-1 cells, as well as to CHO-CAR- and cardiac fibroblasts, MSC only minimally
express CAR at levels nearly comparable with secondary antibody controls. As
for CAR, MSC also only moderately express DAF. CVB3 RNA copy number, expressed
as CVB3 towards L32, decreased over time in MSC, with 4.1–fold (p=0.0571) and
7.2–fold (p<0.05) lower levels at 24h and 48h versus 4h post-infection,
respectively. In parallel, no differences in cell viability were found between
serum starved and CVB3-infected MSC. Medium of MSC collected 24h after CVB3
infection did not induce any plaques on HeLa cells. In contrast, CVB3 RNA copy
number rised in HL-1 over time, with 9.0–fold (p<0.01) higher RNA levels at
24h versus 12h post-infection. Compared to serum-starved HL-1 cells,
CVB3-infected HL-1 showed gradually more cell death over time post CVB3
infection. MTS assay demonstrated 1.9–fold (p<0.0001), 1.5-fold (p<0.0001) and
1.2–fold (p<0.05) lower cell viability at 48h, 24h and 12h post CVB3-infection
versus 4h post CVB3-infection, respectively. In cardiac fibroblasts, CVB3 copy
number was 3.9-fold (p=0.05) higher at 48h compared to 4h post CVB3-infection.
In parallel, cell viability was significantly decreased in CVB3-infected
compared to serum starved cardiac fibroblasts 48h post CVB3 infection. The
viral titer of medium collected from cardiac fibroblasts 24h post infection
was 28-fold (p<0.05) lower compared to the titer of HL-1 medium. Annexin
V/7AAD FACS analysis demonstrated that MSCs decreased the 4.2-fold (p<0.05)
CVB3-induced HL-1 apoptosis to levels not significantly different from those
of non-infected cells. In parallel, DCF FACS analysis showed that CVB3 induced
ROS production in HL-1 cells by 6.3–fold (p<0.01), whereas MSC reduced the
increased ROS production by 5.1–fold (p<0.01) to levels not significantly
different from those of non-infected controls. When MSCs were pre-treated with
10 mM of L-NAME or cultured in the presence of 1 µg/ml of anti-mouse IFN-γ
antibody or cultured on a transwell, the anti-apoptotic and anti-oxidative
effects of MSC were abrogated. MSC did not reduce CVB3 RNA copy number in
CVB3-infected HL-1 cells, but decreased the viral CVB3 titer by 4.7-fold
(p<0.05), an effect which was blocked in the presence of L-NAME or anti-mouse
IFN-γ antibody. Co-culture of CVB3-infected HL-1 cells with cardiac
fibroblasts aggravated CVB3-induced apoptosis. Conclusion - In conclusion, we
could demonstrate that CVB3 replication does not take place in MSC and that
MSC do not suffer from CVB3 infection. Besides this important safety aspect,
we could show that MSC have a direct protective effect on CVB3-infected HL-1
cells, i.e. in the absence of any immunomodulatory cells. MSC exert anti-
apoptotic as well as anti-oxidative effects on CVB3-infected HL-1 cells in a
NO-, IFN-γ-, and cell-contact-dependent way. Finally, MSC can reduce the viral
progeny release.
de
dc.description.abstract
Hintergrund: Patienten mit dilatativer Kardiomyopathie zeigen unter den heute
üblichen Behandlungsmöglichkeiten eine schlechte Prognose. Es ist deshalb
nötig, alternative Behandlungsmöglichkeiten zu finden. Zahlreiche
experimentelle Studien belegen die Eignung der Zelltherapie zur Verbesserung
der Herzfunktion. Mesenchymale Stammzellen (MSC) haben immunomodulatorische
Eigenschaften und sind eine geeignete Zellquelle für die Behandlung von
Herzinfarkt und Kardiomyopathie. Ziel: Das Ziel der vorliegenden Studie war zu
untersuchen, ob MSC potentielle Kandidaten zur Behandlung der Coxsackievirus
B3 (CVB3) induzierten inflammatorischen dilatativen Kardiomyopathie sind. Die
Studie fokussiert sich auf die Untersuchung der Infektion von MSC mit CVB3,
der Replikation des CVB3 in MSC und der Viabilität der MSC nach einer
Infektion mit CVB3. Außerdem wurde untersucht, ob und wie MSC-unabhängig von
ihren immunomodulatorischen Eigenschaften , d.h. in Abwesenheit
immunoregulatorischer Zellen – direkte protektive Effekte auf CVB3-infizierte
Cardiomyocyten und deren Apoptose und oxidativen Stress haben. Methoden: Um
den potenziellen infectivity von MSC, der Ausdruck des coxsackievirus-
adenovirus Empfängers (AUTO) und der Co-Empfänger-Zerfall zu studieren, der
Faktor (DAF) beschleunigt, wurden beide notwendig für das CVB3
Auffassungsvermögen, auf MSC durch die FACS Analyse bewertet. Chinesischer
Hamster (CHO) Eierstockzellen, die AUTO und HL-1 Zellen, seitdem
cardiomyocytes überausdrücken, sind die Zielzellen von CVB3, wurde als
positive Steuerungen verwendet. CHO fehlendes AUTO und Herzmittel fibroblasts,
bekannt, nur niedriges AUTO auszudrücken, wurden als negative Steuerungen
verwendet. Dann wurden MSC mit CVB3 an einer Vielfältigkeit der Infektion
(m.o.i) angesteckt. 5 für 1.. Zellenlebensfähigkeit war 4., 12., 24., und 48.
nach CVB3 Infektion über eine MTS-Feinprobe entschlossen. Um zu bewerten, ob
Virenerwiderung und Virennachkommenschaft-Ausgabe stattfinden, wurde dasselbe
Zeitrahmen-Experiment durchgeführt, und Zellen und Medium wurden gesammelt, um
CVB3 RNS-Kopie-Zahl und Plaque-Bildung beziehungsweise zu bestimmen. Alle
Experimente wurden in der Parallele mit HL-1 und Herzmittel fibroblasts
durchgeführt. Um die Wirkung von MSC auf CVB3-angestecktem HL-1 zu bestimmen,
waren unetikettierte, DiO-etikettierte oder Dil-etikettierte MSC cocultured
mit CVB3-angestecktem HL-1 zu RNS-Zwecken, apoptosis (Annexin V/7AAD FACS) und
Oxidative-Betonung (DCF FACS) Analyse beziehungsweise. Um nachzuforschen, ob
die MSC-vermittelten Wirkungen Stickstoffoxyd (NICHT) - Abhängiger sind,
wurden MSC mit dem iNOS Hemmstoff mit N-omega-nitro-arginine Methyl Ester
(L-NAME) vorverhandelt. Um zu bestimmen, ob MSC die Anwesenheit von IFN-γoder
Zellenkontakt mit HL-1 brauchen, wurde die Kultur in Anwesenheit von anti-
murine IFN-γ Antikörper oder auf einer transwell Membran beziehungsweise
durchgeführt. Zu bestimmen, ob Zellenkontakt per se zu einer Verbesserung in
der Bedingung der HL-1 Zellen, cocultures HL-1 Zellen mit dem Herzmittel
fibroblasts statt MSC führt, wurden durchgeführt. Das Medium von Coculture-
Experimenten wurde gesammelt, um virentiter über die Plaque-Bildung auf HeLa
Zellen zu analysieren. Ergebnisse: Verglichen mit dem CHO-AUTO und HL-1
Zellen, sowie mit dem CHO-AUTO - und Herzmittel fibroblasts drücken MSC nur
minimal AUTO an mit sekundären Antikörper-Steuerungen fast vergleichbaren
Niveaus aus. Bezüglich des AUTOS drücken MSC auch nur gemäßigt DAF aus.
CVB3-RNS kopiert Zahl, ausgedrückt als CVB3 zu L32, vermindert im Laufe der
Zeit mit MSC, mit der 4.1 Falte (p=0.0571) und 7.2 Falte (p <0.05) niedrigere
Ebenen an 24. und 48. gegen 4. Postinfektion beziehungsweise. In der Parallele
wurden keine Unterschiede in der Zellenlebensfähigkeit zwischen dem Serum
verhungert und CVB3-angestecktem MSC gefunden. Das Medium von MSC versammelte
sich 24., nachdem CVB3 Infektion keine Plaquen auf HeLa Zellen veranlasste. Im
Gegensatz, CVB3 RNS-Kopie-Zahl rised in HL-1 im Laufe der Zeit, mit der 9.0
Falte (p <0.01) höhere RNS-Niveaus an 24. gegen 12. Postinfektion. Verglichen
mit serum-verhungerten HL-1 Zellen zeigte CVB3-angesteckter HL-1 allmählich,
dass mehr Zellentod im Laufe der Zeit CVB3 Infektion anschlägt. MTS-Feinprobe
demonstrierte 1.9 Falte (p <0.0001), 1.5 Falte (p <0.0001) und 1.2 Falte (p
<0.05) niedrigere Zellenlebensfähigkeit an 48., 24. und 12. Post-
CVB3-Infektion gegen 4. Post-CVB3-Infektion beziehungsweise. Im Herzmittel
fibroblasts war CVB3 Kopie-Zahl (p=0.05) höher an 48. verglichen mit 4. Post-
CVB3-Infektion 3.9-Falten. In der Parallele wurde Zellenlebensfähigkeit in
CVB3-angesteckt verglichen mit dem verhungerten Herzmittel des Serums
fibroblasts 48. CVB3 Postinfektion bedeutsam vermindert. Der virentiter des
Mediums gesammelt vom Herzmittel fibroblasts 24. Postinfektion war (p <0.05)
tiefer verglichen mit dem titer des HL-1 Mediums 28-Falten. Annexin V/7AAD
FACS Analyse demonstrierte, dass MSCs die 4.2 Falte (p <0.05)
CVB3-veranlasster HL-1 apoptosis zu von ''denjenigen von nichtangesteckten
Zellen nicht bedeutsam verschiedenen Niveaus verminderte. In der Parallele,
DCF FACS Analyse zeigte, dass CVB3 ROS Produktion in HL-1 Zellen durch die 6.3
Falte veranlasste (p <0.01), wohingegen MSC die vergrößerte ROS Produktion
durch die 5.1 Falte (p <0.01) zu von ''denjenigen von nichtangesteckten
Steuerungen nicht bedeutsam verschiedenen Niveaus reduzierte. Als MSCs mit 10
Mm des L-NAMENS oder kultiviert in Anwesenheit von 1 µ vorverhandelt wurden
g/ml der Antimaus IFN-γ Antikörper oder kultiviert auf einem transwell, dem
anti-apoptotic und Anti-Oxidative-Wirkungen von MSC wurden abgeschafft. MSC
reduzierte CVB3 RNS-Kopie-Zahl in CVB3-angesteckten HL-1 Zellen nicht, aber
verminderte den viren-CVB3 titer durch die 4.7 Falte (p <0.05), eine Wirkung,
die in Anwesenheit vom L-NAMEN oder Antimaus IFN-γ Antikörper blockiert wurde.
Die Company-Kultur von CVB3-angesteckten HL-1 Zellen mit dem Herzmittel
fibroblasts erschwerte CVB3-veranlassten apoptosis. Beschluss: Schließlich
konnten wir demonstrieren, dass CVB3 Erwiderung in MSC nicht stattfindet, und
dass MSC unter CVB3 Infektion nicht leidet. Außer diesem wichtigen
Sicherheitsaspekt konnten wir zeigen, dass MSC eine direkte Schutzwirkung
CVB3-angesteckte HL-1 Zellen, d. h. ohne irgendwelche immunomodulatory Zellen
anhaben. MSC gebrauchen anti-apoptotic sowie Anti-Oxidative-Wirkungen auf
CVB3-angesteckte HL-1 Zellen in a NEIN-, IFN-γ-, und zellen-kontakt-abhängigem
Weg. Schließlich kann MSC die Virennachkommenschaft-Ausgabe reduzieren.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
mesenchymal stem cells
dc.subject
Coxsackievirus
dc.subject
inflammatory cardiomyopathy
dc.subject.ddc
600 Technik, Medizin, angewandte Wissenschaften::610 Medizin und Gesundheit
dc.title
Effect of mesenchymal stem cells on coxsackievirus B3-induced inflammatory
cardiomyopathy
dc.contributor.contact
pengj47@hotmail.com
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Med. C. Tschöpe
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Rer. Nat. M. Sittinger ; Prof. Dr. Med. A. Staudt
dc.date.accepted
2010-05-16
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000017124-5
dc.title.translated
Einfluss von mesenchymalen Stammzellen auf Coxsackievirus B3-induzierten
inflammatorischen Kardiomyopathie
de
refubium.affiliation
Charité - Universitätsmedizin Berlin
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000017124
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FUDISS_derivate_000000007477
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free
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open access