dc.contributor.author
Milenkovic, Stefan
dc.date.accessioned
2018-06-07T17:24:08Z
dc.date.available
2018-03-06T13:59:03.906Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/3799
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-7999
dc.description
1 Proteins: Introduction 22 1.1 Amino acids . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . . . . . . . . 23 1.2 H-bonds and Important Protein Parameters
. . . . . . . . . . . . . . 24 1.3 Protein Structural Elements . . . . . . . .
. . . . . . . . . . . . . . . 26 1.3.1 α-helix . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . . . . . . . 26 1.3.2 β-sheet . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . . . . . . 27 1.3.3 Turns and loops . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . . . 27 2 SecA ATPase and protein secretion 30 2.1 SecA . . . .
. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31 2.2 SecA
and ATP-hydrolysis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34 2.3 SecA
and Preprotein . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 37 2.4
SecA and SecYEG . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 40 3
Methods 42 3.1 Starting Coordinates . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . 42 3.2 Force field . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . . 44 3.2.1 Foundations . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . 44 3.2.2 Force Field Properties . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . 45 3.2.3 Force Field Form and parameterization . . . . . . . . .
. . . . 47 Setup . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . 49 3.3.1 49 3.3 3.4 General Approach . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . . Molecular Dynamics Simulations. . . . . . . . . . . . . . .
. . . . .50 3.5 H-bonding maps . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . 53 3.6 PCA and LMI . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . 55 3.7 Software . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . . . . . 57 4 Results
4.1..........................................................................58
MD Trajectories . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58
4.1.1 Sim1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58
4.1.2 Sim2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60
4.1.3 Sim3 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60
4.1.4 Sim4 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60
4.1.5 Sim5 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 61
4.1.6 SimA and SimB . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 61 4.2
General properties . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 62
4.3 Water Occupancy in Nucleotide Binding Pocket . . . . . . . . . . . . 65
4.3.1 D207N mutation effect . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 69 4.4
H-bonding Maps . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 71
4.5 Influence of Signal Peptide on SecA’s dynamics . . . . . . . . . . . . 76
5 Conclusion .....85 A
Publications..............................................................................
88 B Relevant
mutations................................................................ 113
C Data analysis and convergence tests................................ 114 C.1
Water bridge time series . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 114
C.2 H-bonding maps . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
116 C.3 Secondary Structure Analysis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. 120 C.4 Convergence of SecA-SP interactions . . . . . . . . . . . . . . . .
. . 121 C.5 PCA convergence . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . 122 C.6 LMI convergence . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .
. . . . . . 123 D Dihedral
angles................................................................124 E
CMAP correction
...............................................................126 F PMF
......................................................................................127
dc.description.abstract
SecA ATP-ase is the essential part of the bacterial secretion machinery, which
employs the energy of the ATP binding and hydrolysis to push newly synthesized
proteins (preproteins) across the cytoplasmic membrane. Due to its importance,
SecA has been extensively studied by various experimental techniques. Still,
the exact mechanism of SecA’s chemo-mechanical coupling that leads to a
successful completion of the translocation process remains unrevealed. The
underlying reason for this could be a very complex nature of the translocation
process, which involves many factors that are mutually coupled . X-ray
studies, for instance, can capture SecA in a certain conformation and NMR
could assign dynamical properties to the SecA’s structural elements. The
analysis of SecA’s structures obtained in this way, can give predictions of
possibly important amino acid residues for SecA function. Later on, these
predictions can be confirmed or denied by mutagenesis studies. However, SecA
has several hundreds of amino acid residues and a systematic mutagenesis check
could demand a significant amount of work and time. Comined together,
aforementioned methods provided valuable insights of the SecA function, but
failed to answer the question of the mechanism behind aforementioned chemo-
mechanical coupling. A promising approach to this problem could be molecular
dynamics (MD) simulations. The MD simulations are capable of animating the
static SecA structures obtained by the X-ray crystallography and providing
information of SecA’s dynamics that could be used for better understanding and
explanation of the SecA’s function. Further more, the MD simulations give per-
atom description of the processes that occur in SecA thus, allowing an easy
manipulation of the structure (such are ligand removal or binding, mutations
etc.) which could cover many questions that remained open after the
experimental studies. Another reason for employing the MD simulations is that
the computational studies of the SecA were rarely performed. Moreover, this
thesis 5brought the first publication about the SecA that was solely based on
computations or, to be more precise, on MD simulation to our knowledge. MD
simulations were the key asset in this thesis and they were performed on the
SecA originating from three different organisms. They were used to probe
different perturbations such as mutations, nucleotide removal or signal
peptide binding. The trajectories obtained by the MD simulations have been a
subject of a robust analysis which yielded several very important results. A
thorough analysis of the nucleotide binding pocket in the ADP-bound B. sub-
tilis and T. maritima SecA led to the discovery of the water bridging of the
amino acids D207 and E208, which are parts of the evolutionary conserved DEAD
mo- tif (T.maritima D252/E253). This observation was experimentally confirmed
in the high-resolution crystal structure of T. maritima that was published in
2015 completely independent from this research. Additionally, the dependence
of water behaviour in the nucleotide binding pocket on the nucleotide binding
state suggested the impor- tance of the H-bonding networking for SecA’s
function. The observed complexity of the H-bonding networking, initially
localized in the nucleotide binding pocket, promptly spread out to the rest of
the SecA showing how extensive the H-bonding networks in a protein could be.
In order to get an answer how important these net- works are, a fast and
efficient way of characterizing the H-bonding networks, named H-bonding map,
was developed. Indeed, H-bonding maps dissected complex hydro- gen bonding
dynamics in SecA marking the SecA’s helical scaffold domain (HSD) as a central
figure in already mentioned H-bonding networks. This observation led to the
hypothesis that H-bonding networks play a crucial role in allosteric changes
in SecA. Another important aspect in this thesis was the interaction of the
SecA with other elements of the translocation machinery. Therefore, a role of
the ligand presence on SecA’s dynamics was extensively studied with the
special focus on the ADP and the signal peptide presence. The reasons for such
peculiar interests are condensed in fol- lowing: i) ATP binding/ADP release
induce conformational changes in the SecA and promote the preprotein
translocation and ii) binding of the preprotein behaves as an allosteric
activator of the SecA activity and prevents the uncontrolled ATP hydrol- ysis.
To uncover the possible allosteric effects of the preprotein on SecA’s
dynamics complex of the SecA and the preprotein’s signal sequence (SP) was
simulated. The principal component analysis (PCA) was chosen to be a tool for
the dissec- tion of important modes of motion and couplings established
between the different functional domains of the SecA. The PCA findings were
confirmed by the indepen- dent calculations of the linear mutual information
(LMI), a measure of the correlation between two different atoms. These
investigations indicated that a long-distance cou- pling is established
between the SecA’s domains in presence of the SP. Furthermore, the regions of
highly correlated residues from the different domains correspond to the
results of the H-bonding maps, confirming that H-bonding networks possibly
serve as the allosteric transducers. In the summary, the results obtained in
this thesis led to the conclusion that instead of one specific amino acid
residue serving as the catalytic base proposed by the previous experimental
work, the water-bridge between two DEAD amino acid residues, D207 and E208,
exists. Moreover, it was noticed that the water-bridge presence is nucleotide
dependent and highly sensitive to D207N mutation, which is proven to abolish
catalytic activity of SecA. H-bonding map, a novel method for visualization of
the H-bonding dynamics showed complex interconnections between functional
domains of SecA achieved via the H-bonds where helical scaffold domain was
identified as the central part of such interactions. Finally, research was
expanded to the complex relation between the SecA and SP, a short tripartite
sequence which is found in the N-terminus of every preprotein and plays very
important, but not fully understood role, in translocation process. The
results of the analysis indicated the establishment of the long-distance
coupling between different domains of SecA which seems to be achieved via
already identified networks of H-bonds. Since the ATP hydrolysis is one of the
most common energy sources in biological systems and signal peptides are
universal segment efficiently recognized by many different proteins, these
results give a possible guidelines for analysis of similar systems and
problems.
de
dc.description.abstract
SecA ATPasen ist der essentielle Teil der bakteriellen Sektretionsmaschinerie,
die die Energie der ATP-Bindung und Hydrolyse nutzt, um frisch synthetisierte
Proteine aus Zyklomembran herauszutransportieren. Aufgrund seiner Bedeutung
wurde SecA aufs intensivste mit unterschiedliche experimentellen Methoden
untersucht. Dennoch konnte bislang der exakte Mechanismus des
Translokationsprozesses nicht verstanden werden. Die Translokation beinhaltet
mehrere aneinander gekoppelte Faktoren und die Komplexität des Prozesses
könnte die Ursache für den Mangel einer Beschreibung sein. Molekulardynamik-
Simulationen (MD-Simulationen) ermöglichen es, die statis- chen
Röntgenkristallstrukturen von SecA zu animieren und Informationen über die
Dynamik von SecA zu liefern, und scheinen ein guter Ansatz zur Lösung des
Problems zu sein. Ein weiterer Grund für die Nutzung von MD-Simulationen ist,
dass nur selten Computerstudien von SecA durchgeführt wurden. Dieser Promotion
entsprang eine Erstpublikation über SecA, die komplett auf MD-Simulationen
basierte. Diese MD- Simulationen bilden die Basis für diese Dissertation und
wurden für SecA aus drei verschiedenen Organismen durchgeführt. Es wurden
verschiedene Einflüsse, wie z.B. Mutationen, Entfernung von Nukleotiden oder
Signalpeptid-Bindung, getestet. Die Trajektorien, die aus MD-Simulationen
stammten, wurden einer gründlichen Analyse ausgesetzt, welche mehrere wichtige
Resultate zur Folge hatte. Eine sorgfältige Analyse der
Nukleotidbindungsregion in B. subtilis und T. mar- itima mit gebundenem ADP
führte zur Entdeckung, dass die Aminosäuren D207 und E208, beide Teil des
stark konservierten DEAD-Motivs, durch Wassermoleküle miteinander verbunden
sind. Unabhängig von der hier präsentierten Forschungsar- beit wurde diese
Beobachtung im Jahr 2015 mit der Publikation der hoch auflösenden
Kristallstruktur von T. maritima experimentell bestätigt. Ferner legte die
Abhängigkeit des Verhaltens des Wassers in der Nukleotidbindungsregion vom
Bindungszustands des Nukleotids Nahe, dass das H-Brückennetzwerk eine wichtige
Rolle bei der Funk- tion von SecA spielt. Die beobachtete Komplexität des
H-Brückennetzwerk, das sich ursprünglich in der Nukleotidbindungsregion
befand, weitete sich sehr schnell auf den Rest von SecA aus und zeigte wie
ausgedehnt das H-Brückennetzwerk in einem Pro- tein sein kann. Um eine Antwort
dafär zu bekommen, wie wichtig diese Netzwerke sind, wurden H-Brückenkarten
entwickelt, bei denen es sich um ein schnelles und ef- fizientes Mittel
handelt, mit dem H-Brückennetzwerk charakterisiert werden können.
H-Brückenkarten offenbaren komplexe H-Brücken-Dynamiken in SecA, welche zur
An- nahme führten, dass H-Brückennetzwerke eine entscheidende Rolle bei
allosterischen Änderungen in SecA spielen. Ein weiterer wichtiger Aspekt in
dieser Dissertation war die Interaktion von SecA mit anderen Elementen der
Translokationsmaschinerie. Die Einfluss des Vorhandenseins des Liganden auf
die Dynamik von SecA wurde intensiv untersucht. Hierbei wurde besonderer Fokus
auf ADP und die Präsenz des Signalpep- tids gelegt. Das Interesse für diese
beiden Punkte liegt darin begründet, dass: (I) die Bindung von ATP / die
Freigabe von ADP zu konformationellen Änderungen in SecA führt und die
Translokation des Präkursor-Proteins unterstützt und dass (II) das Binden des
Präkursor-Proteins als allosterischer Aktivator für die Aktivität von SecA
fungiert und unkontrollierter ATP-Hydrolyse vorbeugt. Um mögliche
allosterische Ef- fekte des Präkursor-Proteins auf die Dynamik von SecA
aufzuzeigen, wurde eine Kom- plex bestehend aus SecA und Präkursor-Protein
simuliert. Hauptkomponentenanal- yse, engl. principal component analysis
(PCA), wurde als Werkzeug gewählt, um ein- erseits die wichtigsten Moden der
Bewegung unter verschiedenen Konditionen und an- dererseits die Kupplung
zwischen unterschiedlichen funktionellen Proteindomänen in SecA zu
identifizieren. Die Resultate der PCA wurden durch unabhängige Berechnun- gen
der linearen gegenseitigen Information, engl. linear mutual information (LMI)
un- terstützt. LMI misst die Korrelation zwischen zwei verschiedenen Atomen.
Diese bei- den Untersuchungen, PCA und LMI, deuteten darauf hin, dass bei
Vorhandensein von Signalpeptiden die Kopplung der Domänen von SecA über gro
̈sse Distanzen möglich ist. Die Regionen stark korrelierter Aminosäurereste
von unterschiedlichen Domä- nen stimmen mit den Ergebnissen der
H-Brückenkarten äberein und bestätigen, dass H-Brückennetzwerke mäglicherweise
als allosterische Umwandler fungieren. Zusam- menfassend lässt sich sagen,
dass die in dieser Doktorarbeit vorgestellten Ergebnisse zu dem Schluss
führten, dass entgegen dem Vorschlag vorangegangener Experimente nicht ein
spezifischer Aminosäurerest als katalytische Grundlage dient, sondern eine
Wasserbrücke zwischen zwei DEAD-Aminosäuren, D207 und E208, vorhanden ist.
Ferner wurde festgestellt, dass die Präsenz von Wasserbrücken abhängig vom
Nuk- leotid ist und sehr empfindlich auf die Mutation D207N reagiert, die zur
Einstel- lung der katalytischen Aktivität von SecA führt. H-Brückenkarten, ein
neues Mittel zur Visualisierung von H-Bräckendynamik, zeigen komplexe
Verbindungen zwischen funktionellen Domänen von SecA, die über H-Brücken
ermöglicht werden bei denen die helical scaffold-Domäne eine zentrale Rolle
spielt. Im letzten Schritt wurde die Forschungsarbeit auf die komplexe
Beziehung zwischen SecA und Signalpeptid aus- geweitet. Das Signalpeptid ist
ein eine kurze dreiteilige Sequenz von Aminosäuren, die im N-Terminus jedes
Präkursor-Proteins zu finden ist und eine sehr wichtige, wenn auch nicht
vollständig verstandene Rolle beim Translokationprozess spielt. Die Ergeb-
nisse der Analyse weisen auf die Bildung von Kopplungen zwischen
unterschiedlichen Domänen von SecA über weite Distanzen hin. Diese Kopplungen
scheinen über bere- its identifizierte H-Brückennetzwerke realisiert zu
werden. In dieser Dissertation wird ein möglicher Leitfaden zur Analyse
ähnlicher Systeme und Probleme präsentiert, da ATP-Hydrolyse eine der
häufigsten Energiequellen biologischer System ist und es sich bei
Signalpeptiden um universelle Segmente handelt, die von vielen verschiedenen
Proteinen erkannt werden.
de
dc.format.extent
147 Seiten
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
H-bonding maps
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::530 Physik
dc.title
Hydrogen bonding and conformational coupling of the SecA protein motor
dc.contributor.contact
stmilenkovic@zedat.fu-berlin.de
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Ana-Nicoleta Bondar
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Joachim Heberle
dc.date.accepted
2017-11-07
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000106510-9
dc.title.translated
Wasserstoffbrückenbindung und Konformations-Kopplung des SecA-Protein-Motors
de
refubium.affiliation
Physik
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000106510
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000023311
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dcterms.accessRights.openaire
open access