dc.contributor.author
Ibrahim, Sherif
dc.date.accessioned
2018-06-07T17:17:45Z
dc.date.available
2007-10-16T00:00:00.649Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/3656
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-7856
dc.description
Title, table of contents, abbreviations.
I. REVIEW OF LITERATURE 6
II. AIM OF THE STUDY 19
III. MATERIAL AND METHODS 20
IV. RESULTS (4.1) 43
IV. RESULTS (4.2) 81
IV. RESULTS (4.3) 92
IV. RESULTS (4.4) 100
V. DISCUSSION 104
VI. SUMMARY 126
VII. REFERENCES 130
VIII. Appendix 148
PUBLICATIONS 156
AKNOWLEDGMENTS 157
SELBSTÄNDIGKEITSERKLÄRUNG 158
dc.description.abstract
Monoclonal antibodies identifying leukocyte antigens are highly important
tools for studying equine leukocyte biology. The rational of the present study
was to provide domestic and wild equine immunology with new antibodies to
leukocyte markers filling gaps of available reagents and establish a leukocyte
tool-box for some members of family Equidae. To achieve the target, a large
panel of mostly commercially available anti-leukocyte mAbs was analyzed for
reactivity with equid leukocytes and cell lines. Analysis of 534 mAbs
demonstrated for 31 mAbs a clear positive reactivity, for 2 mAbs a weak
positive reactivity; for 23 mAbs a positive "+"; but possibly valuable
staining; for 15 mAbs an alternate expression pattern from that expected from
human immunology; for 6 mAbs a questionable staining; for 45 mAbs a weak-
positive reactivity and alternate expression pattern, and 356 mAbs remained
negative. In 53 cases, more appropriate target cells, such as thymocytes or
bone marrow stem cells, were not available for screening. Positive mAbs were
directed against CD2, CD5, CD11a, CD11b, CD14, CD18, CD21, CD34, CD44, CD45,
CD49d, CD68, CD83, CD91, CD163, CD172a, CD206, CD283, MHCI, MHCII, and canine
B cell molecule. 22 mAbs spanning 16 different CD antigens were analyzed with
Somali wild ass (Equus africanus somalicus), Grevy s zebra (Equus grevyi), and
Hartmann s mountain zebra (Equus zebra hartmannae) leukocytes using one colour
flow cytometry. Most but not all mAbs cross reacted with the three species.
Cross-reactive mAbs analyzed at this part of the study may be considered the
basis to establish an immune tool-box for these wild equids but require
further analysis. In addition, a broad panel of mAbs predominantly reactive
with equine PBMC were applied on equine cell lines (EqT8888 and eCAS). A
limited number of these mAbs reacted positively with the equine cell lines.
Based on the obtained data, eCAS may represent a very early stage of a myeloid
cell line and EqT8888 may be a B cell lymphoma. Analysis of CD28 was performed
for some members of the order Perissodactyla, including three members of
family Equidae: Somali wild ass, Hartmann s mountain zebra, and Grevy s zebra.
In addition, a member of family Rhinocerotidae, the Greater one-horned
rhinoceros (Rhinoceros unicornis) was included beside the Asian elephant
(Elephas maximus) representing order Proboscidae, family Elephantidae and
members of order Artiodactyla, family Bovidae, such as European bison (Bison
bonasus) and African Buffalo (Syncerus caffer) and one member of family
Giraffidae, Nubian Giraffe (Giraffa camelopardalis). Comparison of CD28 aa
sequence revealed a high degree of interspecies conservation with aa identity
ranging from 68-99%. Animal sequences were more closely related between each
other than to humans and mice represented the out-group. 18 aa mismatches
between equids and human were detected in the extracellular domain and could
explain the inability of six human CD28 specific clones to stain horse
leukocytes. Anti-human polyclonals were used as another tool to detect
important equine CD antigens like CD28 and CD25 to which none of the submitted
mAbs were positive with horse leukocytes. The anti-human CD28 polyclonal Ab
detected a protein likely to be EqCD28 on a small population of lymphocytes in
flow cytometry only, but precipitated it as two proteins of 57 and 46 kDa from
surface biotinylated horse lymphocytes. Cloning and expression of EqCD28 in
insect cells also resulted in two proteins of 57 and 46 kDa. Equine CD25
expression was detected using a goat anti-human IL-2R polyclonal antibody in
flow cytometry. In addition, equine CD25 was immunoprecipitated using this Ab
as a molecule of approximately 55 kDa molecular weight which is analogous to
human CD25. Although just a few mAbs were positive on equine cells (31/534),
the approach may be considered useful, especially as their specificity has
been resolved in this study. In addition, this study supports the use of
highly purified anti-human polyclonal antibodies as an alternative approach in
the analysis of equine leukocyte if their cross-reactivity can be confirmed
and background signals eliminated.
de
dc.description.abstract
Monoklonale Antikörper (mAk), die Leukozyten Antigene identifizieren sind
wichtig um die Biologie von equinen Leukozyten studieren zu können. Das Ziel
dieser Studie war es, neue Antikörper, die sich als Marker für equine
Leukozyten eignen, zu etablieren, um vorhandene Lücken in dem schon
bestehenden Sortiment der equinen Immunologie zu füllen. Um dieses Ziel zu
erreichen, wurde ein großes Feld von weitgehend kommerziell erhältlichen anti-
Leukozyten mAk auf ihre Reaktionsfähigkeit mit equinen Leukozyten und
Zelllinien untersucht. 534 mAk wurden untersucht, davon zeigten 31 mAk eine
deutliche positive Reaktion, 2 mAk eine schwach positive Reaktion; 23 mAk eine
positive, möglicherweise anwendbare Färbung; 15 mAK ein anderes
Expressionsmuster als aus der human Immunologie erwartet. Für 6 mAk zeigte
sich eine fragwürdige Färbung, für 45 mAk eine schwach positive Reaktion und
abweichendes Expressionsmuster und 356 mAk blieben negativ. In 53 Fällen
standen geeignete Zielzellen, wie Thymozyten oder Stammzellen nicht zur
Verfügung. Positive mAk waren gegen CD2, CD5, CD11a, CD14, CD18, CD21, CD34,
CD44, CD45, CD49d, CD68, CD83, CD91, CD163, CD172a, CD206, CD283, MHCI, MHCII,
und ein canines B Zell Molekül gerichtet. 22 mAk, die 16 unterschiedliche CD
Antigene umfassten, wurden auf Leukozyten von Somali Wild Esel (Equus
africanus somalicus), Grevy s Zebra (Equus grevyi), und Hartmann s Zebra
(Equus zebra hartmannae) mittels Durchflusszytometrie getestet. Die meisten
Antikörper haben mit den drei Spezies kreuzreagiert. Die in diesem Teil der
Studie untersuchten mAk können als Basis für die immunologische Untersuchung
dieser wilden Equiden dienen. Sie benötigen aber weitergehende Untersuchungen
um die Ergebnisse zu bestätigen. Zusätzlich wurde eine breite Auswahl von mAk,
die zumeist mit equinen PBMC reagiert haben, auf equinen Zelllinien (EqT8888
und eCAS) getestet. Eine geringe Zahl dieser mAk zeigte eine positive Reaktion
auf diesen. Basierend auf den erhaltenen Daten wäre es möglich dass eCAS einem
sehr frühen Stadium einer myeloiden Zelllinie entspricht und EqT8888 der eines
B-Zell Lymphoms. Die Analyse von CD28 wurde bei einigen Tieren der Ordnung
Perissodactyla, einschließlich dreier Mitglieder der Familie Equidae, Somali
Wild Esel, Hartmann s Zebra, und Grevy s Zebra durchgeführt. Zusätzlich wurde
das Panzernashorn (Rhinoceros unicornis) als ein Angehöriger der Familie
Rhinocerotidae einbezogen. Weiterhin wurden ein asiatischer Elefant (Elephas
maximus) als Vertreter der Ordnung Proboscidae, Familie Elephantidae, ein
europäisches Bison (Bison bonasus) und ein afrikanischer Büffel (Syncerus
caffer) der Ordnung Artiodactyla, Familie Bovidae und eine Nubische Giraffe
(Giraffa camelopardalis) als Angehörige der Familie Giraffidae einbezogen. Der
Vergleich von CD28 Aminosäure Sequenz zeigte eine hohe Identität zwischen den
Aminosäuren (68-99%) der einzelnen Spezies. Das Unvermögen der sechs human-
spezifischen CD28 Ak-Klone, Pferde-Leukozyten zu färben, lässt sich
möglicherweise darauf zurückführen, dass 18 Aminosäuren in der extrazellulären
Domäne abweichen. Die verschiedenen tier-spezifischen Sequenzen zeigten
untereinander eine größere Ähnlichkeit als zur humanen oder Maussequenz,
letztere bildete die Außengruppe. Polyklonale anti-humane AK wurden als ein
weiteres Werkzeug eingesetzt, um andere wesentliche CD-Antigene wie CD28 und
CD25 nachzuweisen, da keiner der bereits getesteten mAk mit den Pferde
Leukozyten reagiert hatte. Der polyklonale anti-humane CD28 Ak konnte ein
Protein, welches wahrscheinlich EqCD28 ist, auf einer kleinen Population der
Lymphozyten mittels Durchflusszytometer nachweisen, präzipitierte aber in zwei
Proteine der Größe von 57 kDa und 46 kDa von der Oberfläche biotinylierter
Pferde Lymphozyten. Die Klonierung und Expression von CD28 in Insektenzellen
ergab ebenfalls zwei Proteine von 57 und 46kDa. Die Expression von CD25 wurde
mittels einem polyklonalen Ziege anti-human IL-2R alpha Ak im
Durchflusszytometer nachgewiesen. Zusätzlich wurde equines CD25 als ein
Molekül mit dem ungefähren Gewicht von 55kDa mittels Immunpräzipitation
dargestellt, analog zu dem humanen CD25. Obwohl nur einige der monoklonalen
Antikörper (31/534) auf equinen Zellen positiv reagiert haben, kann dieser
Ansatz als wertvoll erachtet werden, vor allem da ihre Spezifität in dieser
Studie geklärt wurde. Weiterhin, unterstützt diese Studie die Verwendung von
gereinigten anti-human polyklonalen Ak als einen alternativen Ansatz für die
Analyse equiner Leukozyten, sofern ihre Kreuzreaktivität bestätigt werden kann
und Hintergrund-Signale eliminiert werden können.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
immunoglobulins
dc.subject
monoclonal antibodies
dc.subject
immunoprecipitation tests
dc.subject
flow cytometry
dc.subject
gene expression
dc.subject.ddc
600 Technik, Medizin, angewandte Wissenschaften::630 Landwirtschaft::630 Landwirtschaft und verwandte Bereiche
dc.title
Analysis of monoclonal antibody cross-reactivity with leukocytes from equids
and cloning of CD28
dc.contributor.firstReferee
PD Dr. Falko Steinbach
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Armin Saalmüller
dc.contributor.furtherReferee
PD Dr. Jakob Walter
dc.date.accepted
2007-01-10
dc.date.embargoEnd
2007-10-26
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000003195-3
dc.title.translated
Analyse der Kreuzreaktivität monoklonaler Antikörper mit Leukozyten von
Equiden und Klonierung von CD28
de
refubium.affiliation
Veterinärmedizin
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000003195
refubium.mycore.transfer
http://www.diss.fu-berlin.de/2007/685/
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000003195
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free
dcterms.accessRights.openaire
open access