dc.contributor.author
Baron, Jens
dc.date.accessioned
2018-07-19T15:16:04Z
dc.date.available
2012-08-03T08:46:10.841Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/22508
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-315
dc.description
Inhaltsverzeichnis
..............................................................................................
I
Abbildungsverzeichnis.........................................................................................
V
Tabellenverzeichnis.............................................................................................
VII
Abkürzungsverzeichnis.........................................................................................VIII
Zusammenfassung..................................................................................................2
Abstract
................................................................................................................4
1 Einleitung
...........................................................................................................6
1.1 Monoaminerges Neurotransmittersystem
...............................................................6 1.1.1
Catecholaminerges
Neurotransmittersystem....................................................6
1.1.2 Serotonerges Neurotransmittersystem
.............................................................9 1.1.3
Vesikulärer Monoamintransporter und
Monoaminspeicherung.......................11 1.2 Go-Protein vermittelte
Signaltransduktion..............................................................13
1.2.1 Familien heterotrimerer G-Proteine und deren Aktivitätszyklus
......................13 1.2.2 Goα als Subtyp der Gi-
Proteinfamilie...............................................................16
1.2.3 Konstitutiv aktive und dominant negative Form des Goα
................................17 1.2.4 Physiologie des Go-
Proteins............................................................................18
Goα-
Deletionsmutanten...............................................................................................18
Weitere physiologische Go-vermittelte Effekte
............................................................19 1.3 Zielsetzung
der vorliegenden Dissertation
............................................................26 2 Material
........................................................................................................................27
2.1
Chemikalien...........................................................................................................27
2.2 Verbrauchsmaterialien
..........................................................................................29
2.3 Enzyme und Enzympuffer
.....................................................................................30
2.4 Bakterien- / Hefe-
Stämme.....................................................................................30
2.5 Kits
........................................................................................................................31
2.6 Geräte und
Apparaturen........................................................................................31
Polymerase-Kettenreaktion
(PCR)..............................................................................31
Elektrophorese (DNA, Proteine) und Western Blot
.....................................................31
Photometer..................................................................................................................32
Mikroskope..................................................................................................................32
Homogenisierung von
Gewebe...................................................................................32
Zentrifugen..................................................................................................................32
Sonstige
......................................................................................................................32
2.7 Software
................................................................................................................33
2.8 Puffer und Lösungen
.............................................................................................34
Inhaltsverzeichnis II Lösungen für die
Agarosegelelektrophorese..............................................................
34 Transformationspuffer für Hefezellen
......................................................................... 34
Lösungen für die Proteinbestimmung
......................................................................... 35
Lösungen für die SDS-PAGE
.....................................................................................
35 Lösungen für die Coomassie-Färbung
....................................................................... 36
Lösungen für das Western Blot-Verfahren und Proteindetektion
............................... 37 Lösung für die subzelluläre
Fraktionierung.................................................................
38 Lösungen für die Neurotransmitteraufnahme
............................................................. 38 Lösungen für
die Proteinextraktion, GST-Pulldown, Immunpräzipitation ................... 39
Weitere
Lösungen.......................................................................................................
39 2.9 Medien
..................................................................................................................
40 Mikrobielle
Medien......................................................................................................
40 2.10
Antikörper.............................................................................................................
41 Primäre
Antikörper......................................................................................................
41 Sekundäre Antikörper
.................................................................................................
42 2.11 Nukleinsäuren
......................................................................................................
42 Oligonukleotide
...........................................................................................................
42 Vektoren
.....................................................................................................................
44 cDNA
..........................................................................................................................
47 3 Methoden
....................................................................................................................
48 3.1 DNA-
Techniken.....................................................................................................
48 3.1.1 Polymerase-Kettenreaktion
............................................................................
48 3.1.2 DNA-Hybridisierung
........................................................................................
49 3.1.3 Ortsspezifische Mutagenese
.......................................................................... 49
3.1.4 Restriktion von DNA mit
Endonukleasen........................................................ 51 3.1.5
Agarosegelelektrophorese..............................................................................
52 3.1.6
Gelelution........................................................................................................
52 3.1.7 Ligation von DNA-Fragmenten
....................................................................... 52
3.1.8 Herstellung und Transformation kompetenter E. coli Bakterien
..................... 52 3.1.9 Isolation von Plasmid-DNA aus E.coli
............................................................ 53 3.1.10
Amplifikation einer cDNA-Bibliothek
............................................................. 53 3.1.11
Herstellung kompetenter
Hefezellen............................................................. 54
3.1.12 Transformation kompetenter
Hefezellen....................................................... 55 3.1.13
DTT-Methode als alternatives Protokoll zur Hefezell-(Ko)-transformation ... 56
3.1.14 Gap Repair homologe Rekombination als Klonierungsstrategie in
Hefe...... 57 3.1.15 Isolation von Plasmid-DNA aus S.
cerevisiae............................................... 58 3.1.16
Konzentrationsbestimmung von DNA-
Lösungen.......................................... 58 3.1.17 DNA-
Sequenzierung.....................................................................................
59 Inhaltsverzeichnis III 3.2 Protein-Techniken
.................................................................................................59
3.2.1 Bestimmung der Proteinkonzentration
............................................................59 3.2.2 SDS-
PAGE......................................................................................................59
3.2.3 Färbung von SDS-Polyacrylamidgelen mit Coomassie Brilliant Blue
.............60 3.2.4 Western Blot-Analyse und
Chemilumineszenzdetektion.................................60 3.2.5
Überexpression und Isolation von Proteinen aus BL21 E. coli
Bakterienzellen................................................................................................61
3.2.6 Gewinnung von Proteinproben aus
Hefezellen...............................................62 3.2.7
Proteinextraktion
.............................................................................................62
3.2.8
Massenspektrometrie......................................................................................63
3.3 Experimente zur Protein-Protein-Interaktion
.........................................................64 3.3.1 Das
Gal4-basierte Y2H-
System......................................................................64
3.3.2 Verpaarung von
Hefezellen.............................................................................66
3.3.3 Das Split-Ubiquitin Membran-Y2H-
System.....................................................66 3.3.4
Immunpräzipitation..........................................................................................69
3.3.5 Glutathion-S-Transferase-Pulldown
................................................................70 3.4
Versuchstiere
........................................................................................................71
3.5 Verhaltenswissenschaftliche Versuche - Rota Rod-Experiment
...........................71 3.6 Subzelluläre
Fraktionierung...................................................................................72
3.7 HPLC-Analytik
.......................................................................................................73
3.8 Aktivitätsnachweis der
Monoaminoxidase.............................................................74
3.9 Neurotransmitteraufnahmetest - Monoaminaufnahme in synaptische Vesikel
.....74 3.10 In silico-Methoden
................................................................................................76
3.11 Versuchsdurchführung und
-auswertung..............................................................76 4
Ergebnisse...................................................................................................................77
4.1 Analyse einer möglichen VMAT2-Go2α-Interaktion
...............................................77 4.1.1 Klassische
Gal4-basierte Y2H-Analyse
..........................................................77 4.1.2 Analyse
über das Split-Ubiquitin-basierte Membran-Y2H-System..................79 4.1.3
Immunpräzipitation..........................................................................................87
4.1.4 GST-Pulldown mit zytoplasmatischen Domänen des VMAT2
........................88 4.2 Charakterisierung des monoaminergen Systems von
Go1α-/- und Go1/2α-/- Mäusen auf molekularer Ebene
............................................................................92
4.2.1 Vesikuläre Aufnahme von radioaktiv markiertem Serotonin
...........................92 4.2.2 Striatales
Dopamin..........................................................................................94
4.2.3 Monoaminoxidase-Aktivität in Synaptosomen
................................................95 4.2.4 Western Blot-Analyse
Dopamin-synthetisierender Enzyme............................97 4.2.5 Western
Blot-Analyse monoaminerger
Transporter........................................98 Inhaltsverzeichnis IV
4.2.6 Western Blot-Analyse dopaminerger Rezeptoren und des Gsα
..................... 99 4.3 Charakterisierung zusätzlicher phänotypischer
Merkmale von Go1α-/- und Go1/2α-/-
Mäusen...................................................................................................
101 4.3.1 Western Blot-Analyse der Go1α- und Go2α-
Expression................................. 102 4.3.2 Motorisches Verhalten
von Wildtyp-, Go1α-/-, Go2α-/- und Go1/2α-/- Mäusen .... 103 4.3.3 Wachstum
und Entwicklung der Go1α-/- und Go1/2α-/- Mäuse ......................... 105
4.3.4 Western Blot-Analyse von Schlüsselenzymen bekannter Wachstumssignalwege
in Wildtyp-, Go1α-/- und Go1/2α-/-
Mäusen.......................................... 111 5 Diskussion
.................................................................................................................
114 5.1 VMAT-Go-Signaltransduktion
..............................................................................
114 5.1.1 Hinweise auf eine VMAT2-Goα-
Interaktion................................................... 115 5.1.2
Hinweise auf eine VMAT2-Gβ-Interaktion
.................................................... 115 5.1.3 Einschränkungen
des Y2H-Verfahrens zum Nachweis von G-Protein- Interaktionen
.................................................................................................
116 5.1.4 G-Protein-aktivierende Peptide, die nicht GPCRs entsprechen
................... 117 5.1.5 Sequenzvergleich zytoplasmatischer VMAT2-Domänen
mit GPCRähnlichen Peptiden
.......................................................................................
119 5.1.6 Resümee zur VMAT-Go-Interaktion
.............................................................. 123 5.2
Physiologie der VMAT-Go-Signaltransduktion
.................................................... 124 5.3 Auswirkungen der
Goα-Deletion auf die Physiologie des monoaminergen Systems
..............................................................................................................
126 5.4 Auswirkung der Goα-Deletion auf weitere phänotypische
Merkmale.................. 130 5.5
Schlussfolgerungen.............................................................................................
132 Literaturverzeichnis
.........................................................................................................
134
Publikationen..................................................................................................................
143 Preise
..............................................................................................................................
143 Selbstständigkeitserklärung
............................................................................................
145
Lebenslauf......................................................................................................................
147
Anhang...........................................................................................................................
149
dc.description.abstract
Vorangegangene Studien führten zu einem Modell der präsynaptischen Regulation
der vesikulären Monoaminaufnahme. In diesem Modell wird davon ausgegangen,
dass der vesikuläre Monoamintransporter (VMAT) wie ein G-Protein gekoppelter
Rezeptor (GPCR) funktioniert und das Vesikel-assoziierte heterotrimere
Go2-Protein aktiviert, welches in einer negativen Rückkopplungsschleife direkt
oder indirekt über nachgeschaltete Effektoren die vesikuläre Monoaminaufnahme
verringert. Diese Regulation ist damit möglicherweise über die Justierung der
Quantengröße auf vesikulärer Ebene an der Feinabstimmung des monoaminergen
Neurotransmittersystems beteiligt. Dieser Signalweg wird über die vesikuläre
Monoaminkonzentration gesteuert. Wenn eine ausreichende vesikuläre
Konzentration erreicht ist, sind verschiedene Monoamine in der Lage die GPCR-
ähnliche Funktion des VMAT über dessen große luminale Schleife zu aktivieren.
Zentrale Ergebnisse dieser Arbeit zeigen eine Interaktion zytoplasmatischer
VMAT2-Domänen mit der Goalpha-Untereinheit und mit Gbeta, wie es für einen
GPCR erwartet wird. Diese Ergebnisse liefern damit die Grundvoraussetzung
dafür, dass der VMAT eine GPCR-ähnliche Funktion besitzt. Hierfür kamen
molekularbiologische Methoden zum Einsatz, wie z. B. das Yeast Two-Hybrid- und
das GST-Pulldown-Verfahren. Am Maus-Modell konnte über die Deletion der
Goalpha-Splice-Isoform Go1alpha bzw. Go2alpha ein Zusammenhang zur striatalen
Dopamin-Homöostase hergestellt werden. Go1alpha-/- Mäuse zeigen ein gegenüber
Wildtyp-Mäusen erhöhtes striatales Dopamin-Niveau, während dieses in
Go2alpha-/- Mäusen vermindert ist. Dabei ist zu beachten, dass in Go1alpha-/-
Mäusen die Go2alpha-Expression im Vergleich zum Wildtyp erhöht ist. In der
Doppelmutante (Go1/2alpha-/-) dagegen ist das Dopamin-Niveau ausgeglichen.
Dies legt eine Wechselwirkung des Go1alpha und der Go2alpha-Signaltransduktion
zur Regulation der vesikulären Monoaminaufnahme bezüglich der Dopamin-
Homöostase nahe. Eine Folge der Störung der Dopamin-Homöostase ist ein
verändertes motorisches Verhalten der Tiere. Go2alpha-/- Mäuse zeigen
allerdings erst unter wiederholter Verabreichung von Psychostimulanzien
(Amphetamin, Kokain) Veränderungen bezüglich ihrer motorischen Aktivität im
Vergleich zum Wildtyp. Die Go1alpha-Deletionsmutante ist dagegen bereits ohne
Einfluss von Psychostimulanzien stark beeinträchtigt. Diese Störung wird über
das zusätzliche Deletieren des Go2alpha (Go1/2alpha-/-) im Vergleich zu
Go1alpha-/- Mäusen gemildert. Letzteres spiegelt sich auch in der
Überlebenschance der Tiere wieder. Während Go2alpha-/- Mäuse eine den Wildtyp-
Tieren entsprechende Entwicklung zeigen, sind Go1alpha-/- und Go1/2alpha-/-
Mäuse stark wachstumsretardiert und weisen eine verkürzte Lebensspanne auf.
Auch hier ist dieser Phänotyp der Go1/2alpha-Deletionsmutante gegenüber
Go1alpha-/- Mäusen weniger stark ausgeprägt. Wir schließen daraus, dass
Go1alpha überlebensnotwendig ist, aber eine veränderte Go2alpha-Expression
über eine folgliche Fehlregulation der vesikulären Monoaminaufnahme bezüglich
des Überlebens, der striatalen Dopamin-Homöostase und damit der motorischen
Aktivität einen großen Einfluss besitzt. Eine Beeinträchtigung der Dopamin-
Homöostase resultiert zudem in Krankheiten wie Schizophrenie, Depression und
weiteren affektiven Störungen (Übersicht von Beaulieu und Gainetdinov, 2011).
Damit sind die Goalpha-Splice-Isoformen geeignete Kandidaten für eine Analyse
im Bezug auf Dopamin-basierte Krankheiten und könnten neue Zielmoleküle für
therapeutische, pharmakologische Ansätze darstellen.
de
dc.description.abstract
Previous studies led to a model which suggests a role for the presynaptic
regulation of the vesicular monoamine uptake in fine-tuning the monoaminergic
neurotransmitter system by adjusting its quantal size on the vesicular level.
In this model it is believed, that the vesicular monoamine transporter (VMAT)
functions like a G protein coupled receptor (GPCR) and activates the vesicle
associated heterotrimeric Go2 protein, which in turn attenuates the vesicular
monoamine uptake in a negative feedback loop either directly or indirectly by
downstream effectors. This signal pathway is regulated by the vesicular
monoamine content. Is the vesicular concentration sufficient, different
monoamines are capable of activating the GPCR-like function of the VMAT via
its large luminal domain. Here, in this work essential results show a physical
interaction of cytoplasmic VMAT2 domains with the Go protein alpha-subunit and
Gbeta, obtained by biomolecular methods, such as the yeast two hybrid and the
GST pulldown assay. Thereby, these results provide the basic requirement for
the VMAT to own a GPCR-like function, further confirming our model. In mice,
deletion of the Goalpha splice isoform Go1alpha and Go2alpha, respectively,
results in a disturbance of the striatal dopamine homeostasis. Go1lalpha-/-
mice show an increased striatal dopamine level in comparison to wild type
mice, whereas it is decreased in Go2alpha-/- mice. Here it is worth
mentioning, that the Go2alpha expression is increased in Go1alpha-/- mice
compared to wild type. In contrast, the double mutant (Go1/2alpha-/-) shows a
balanced dopamine level. From this we conclude, that there might be a cross
talk between Go1alpha and the Go2alpha signal transduction, which regulates
the vesicular monoamine uptake, regarding dopamine homeostasis. In Goalpha
deletion mutants the disturbed dopamine homeostasis results in altered motor
activity. Whereas Go2alpha-/- mice only show changes in their motor activity
compared to wild type animals after repeated treatment with psychostimulants
(amphetamine, cocaine), the Go1alpha deletion mutant shows strong motor
impairments even without drug application. The motor impairment is less
pronounced in double knockouts (Go1/2alpha-/-) compared to Go1alpha-/- mice. A
similar effect is seen when assessing the survival rates of these animals.
While Go2alpha-/- mice develop similar to wild type animals, Go1alpha-/- and
Go1/2alpha-/- mice are strongly growth retarded and display a shortened life
span. This phenotype is less prominent in the Go1/2alpha deletion mutant
compared to Go1alpha-/- mice. We conclude, that Go1alpha is crucial for
survival, but that altered expression of Go2alpha and consequently a
misregulated vesicular monoamine uptake have a significant influence on
survival, striatal dopamine homeostasis and therefore on regulating motor
activity. In addition a disturbed dopamine homeostasis results in diseases
like schizophrenia, depression and other affective disorders (reviewed by
Beaulieu and Gainetdinov, 2011). Thus for the analysis of dopamine-based
disorders Goalpha splice isoforms are suitable candidates that could be new
targets for therapeutical, pharmacological studies.
en
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
monoaminergic neurotransmitter system
dc.subject
heterotrimeric G protein
dc.subject
vesicular monoamine uptake
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::572 Biochemie
dc.title
Go-Protein vermittelte Regulation der vesikulären Monoaminaufnahme und dessen
Einfluss auf das monoaminerge Neurotransmittersystem
dc.contributor.contact
jens.baron@charite.de
dc.contributor.firstReferee
Frau Prof. Dr. Ahnert-Hilger
dc.contributor.furtherReferee
Herr Prof. Dr. Multhaup
dc.date.accepted
2012-06-27
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000038267-3
dc.title.translated
Go protein mediated regulation of vesicular monoamine uptake and its influence
on the monoaminergic neurotransmitter system
en
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000038267
dcterms.accessRights.openaire
restricted access