dc.contributor.author
Morra, Giulia
dc.date.accessioned
2018-06-07T15:45:49Z
dc.date.available
2006-01-24T00:00:00.649Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/1571
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-5773
dc.description
Title, acknowledgments, contents, abstract 1\. Protein folding and stability
5
2\. Molecular dynamics of proteins 18
3\. Implicit solvent models 32
4\. Unfolding CspB by means of biased molecular dynamics 47
5\. Study of the stability of an artificial ion channel 64
6\. Hydrogen bonding pattern of cytochrome c 80
Bibliography 96
dc.description.abstract
The study of stability and folding properties of proteins is one of the major
fields of research in biological sciences, recently boosted by the increasing
amount of genomic data. Understanding the mechanisms ensuring protein
stability and function is the keypoint for the comprehension of basic life
processes and development of new drugs. For a considerable number of proteins
a reasonably complete picture is available, thanks to the development of novel
experimental techniques and theoretical analysis tools (chapter 1). The
molecular dynamics approach to the study of protein structure and function
plays an important role in biocomputing (chapter 2), providing a useful tool
for verification and prediction of experimental results. The most evident
limit of molecular dynamics simulations is the size, in terms of computing
time and memory load, of the simulations. The microsecond time span reached in
current simulations is too short to observe major structural changes like
protein folding. In order to reduce the computational load, implicit solvent
models based on a continuum description of the surrounding medium (Poisson-
Boltzmann equation or empirical methods) have been developed (chapter 3).
Despite the advantage in terms of time and sampling power, the use of
approximations may introduce artifacts on electrostatic interactions within
the protein. The use of implicit solvents in molecular dynamics is sometimes
thus considered as not reliable. This PhD work aims at investigating the role
played by electrostatic interactions in molecular dynamics simulations of
biomolecular systems under different conditions, from unfolding in presence of
external forces to stability and fluctuations under native conditions. In
chapter 4 the unfolding of the cold shock protein was simulated using two
different methods leading to the same results, confirming a defined unfolding
scheme. One method is thermal unfolding, the other employs a bias force
selecting thermal fluctuations along a suitable unfolding reaction coordinate.
The use of a rather simple implicit solvent model (EEF1 presented in chapter
3) permits an efficient sampling of phase space, including major structural
changes. Our findings are in agreement with experiments. In chapter 5 an
artificial ion channel designed by engineering the gramicidin A peptide is
presented. NMR studies show that the presence of cesium iodide triggers a
structural transition from the inactive to the active form of the channel. The
simulations, performed using the generalized Born approximation, provide
insight into the binding reaction of ions and suggest that these might be
responsible for the stabilization of the active form. Despite some artifacts
due to the implicit solvent approximation, the method yet delivers solid
results in qualitative agreement with experiments. In many cases a detailed
description of solvent-solute interactions is most important, for instance the
analysis of hydrogen bonding pattern under native conditions or in presence of
ligands. In chapter 6 a simulation of a bacterial cytochrome c immersed in a
water box at room temperature is analysed in terms of fluctuations of atomic
positions and of intra-protein hydrogen bonds. This work aims at correlating
simulation data on fluctuations with hydrogen exchange experiments under
native conditions. A good qualitative correlation is reached between stability
of bonds as obtained from exchange data and fluctuations as calculated from
molecular dynamics.
de
dc.description.abstract
Die Studie der Stabilität und des Faltungsprozesses von Proteinen spielt eine
wichtige Rolle in Biologie, seitdem neulich riesige Mengen Genomdaten
verfügbar wurden. Die Frage, wie ein Protein sich faltet, damit es stabil und
funktionsfähig ist, ist interessant, sowohl für die biologische Forschung, als
auch für die pharmakologischen Anwendungen. Ein vollständiges Bild ist für
viele Proteine heutzutage verfügbar, dank der Entwicklung experimenteller
Techniken und theoretischer Analysemethoden (Kapitel 1). Molekulardynamik (MD)
spielt eine wichtige Rolle in der Forschung über Proteinstruktur und Funktion
(Kapitel 2) zur Prüfung und Voraussage von experimentellen Ergebnissen. Die
Bedürfnisse an Rechenzeit und Speicherplatz der Simulationen stellen die
Grenze von Molekulardynamik. Eine Mikrosekundenzeit wird normalerweise in
Simulationen erreicht, die immer noch zu kurz ist, um größere strukturelle
Änderungen wie Proteinfaltung zu beobachten. Um die Rechenzeit zu reduzieren,
sind implizite Lösungsmittelmodelle entwickelt worden, die aus einer
Kontinuumsbeschreibung des umliegenden Mittels stammen (Kapitel 3). Ein
kontinuierliches Lösungsmittel bietet Vorteil wegen geringerer Rechenzeit und
effizientes Samplings. Jedoch kann der Gebrauch von Näherungswerten Artifakte
in den elektrostatischen Wechselwirkungen innerhalb des Proteins verursachen.
Der Gebrauch impliziter Lösungsmittel wird manchmal als unzuverlässig
betrachtet. In dieser Doktorarbeit wird die Rolle elektrostatischer
Wechselwirkungen in MD Simulationen biomolekularer Systeme unter
unterschiedlichen Bedingungen, wie Auffaltung durch externe Kräfte, oder
Fluktuationen im nativen Zustand, untersucht. In Kapitel 4 wurde die
Auffaltung des Kälte- Schock Proteins mit zwei unterschiedlichen Verfahren
simuliert, die zu den gleichen Resultaten führen und somit einen definierten
Entfaltungsprozess bestätigen. Ein Verfahren ist thermische Auffaltung, das
andere setzt eine externe Kraft ein, die Fluktuationen entlang eine
Reaktionskoordinate vorwählt. Die Anwendung von einem einfachen impliziten
Lösungsmittelmodell (EEF1 aus Kapitel 3) erlaubt ein effizientes Sampling des
Phasenraumes und große Veränderungen der Proteinstruktur werden beobachtet.
Ergebnisse sind in Übereinstimmung mit Experimenten. Ein künstlicher
Ionenkanal, der aus dem Peptid Gramicidin A herstellt wurde, ist in Kapitel 5
vorgestellt. NMR Daten zeigen, dass Cäsiumjodid einen strukturellen Übergang
von der unaktivierten zur aktiven Form des Kanals auslöst. Trotz Artifakten,
die durch das implizite Lösungsmittelmodell eingeführt werden, liefert die
Methode dennoch Ergebnisse, die mit Experimenten übereinstimmen. Es gibt
Fälle, in denen eine ausführliche Beschreibung der Interaktionen zwischen
Lösungsmittel und Protein am wichtigsten ist, zum Beispiel die Analyse der
Wasserstoffbrücken unter nativen Bedingungen oder wenn Liganden vorhanden
sind. Im Kapitel 6 wird ein bakterielles Cytochrom c im Wasser bei
Raumtemperatur simuliert. Fluktuationen von Atompositionen sowie
Wasserstoffbindungen unter Proteinatomen werden analysiert. Eine gute
qualitative Übereinstimmung zwischen Stabilität der Bindungen aus Experimenten
und Fluktuationen aus MD Simulationen wird erreicht.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
molecular dynamics
dc.subject
electrostatics
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::530 Physik::530 Physik
dc.title
Role of electrostatics explored with molecular dynamics simulations for
protein stability and folding
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Ernst-Walter Knapp
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Cornelius Froemmel
dc.date.accepted
2005-11-11
dc.date.embargoEnd
2006-01-27
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-2006000293
dc.title.translated
Rolle von Elektrostatik in den Molekulardynamik-Simulationen von
Proteinfaltung und -stabilität
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
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FUDISS_thesis_000000001956
refubium.mycore.transfer
http://www.diss.fu-berlin.de/2006/29/
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open access