dc.contributor.author
Otto, Georg Wilhelm
dc.date.accessioned
2018-06-08T00:55:29Z
dc.date.available
2002-08-26T00:00:00.649Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/12682
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-16880
dc.description
1
0 Title page, table of contents
1 Introduction 1
1.1 Zebrafish as a model organism for studying vertebrate development 2
1.2 Mapping and sequencing of complex genomes 8
1.2.1 Genetic linkage mapping 9
1.2.2 Radiation hybrid mapping 12
1.2.3 Physical mapping 14
1.2.4 Sequencing strategies for complex genomes 17
1.3 High throughput characterisation of the zebrafish transcriptome by gene
catalogues and whole mount in situ screens 19
1.4 Cloning of genes identified in mutants 20
1.5 Genome mapping by interspersed repetitive sequence (IRS)-PCR. 21
1.6 Repetitive elements in the zebrafish genome 23
1.7 Physical mapping of zebrafish chromosome 20 26
2 Objective 30
3 Materials and Methods 31
3.1 Materials 31
3.1.1 Laboratory equipment 31
3.1.2 Chemicals and enzymes 32
3.1.3 Oligonucleotides 33
3.1.4 Kits 34
3.1.5 Other materials 34
3.1.6 Nucleic acids 35
3.1.7 E. coli strains, cell lines and zebrafish strains 35
3.1.8 Libraries 36
3.1.9 Buffers and Solutions 36
3.1.10 Culture Media 38
3.2 Methods 39
3.2.1 Isolation of genomic DNA from tissue or adult fish 39
3.2.2 Plasmid preparation 40
3.2.3 Lysis of yeast cells 40
3.2.4 DNA precipitation 41
3.2.5 Restriction digest 41
3.2.6 Dephosphorylation of DNA 5'-ends 41
3.2.7 Ligation of restriction fragments 41
3.2.8 Preparation of E. coli cells for electroporation 42
3.2.9 Transformation 42
3.2.10 Blue/white selection 42
3.2.11 Picking and handling of libraries 42
3.2.12 Spotting of bacterial colonies onto nylon membranes 43
3.2.13 Spotting of DNA onto nylon membranes 43
3.2.14 Capillary blotting of DNA onto nylon membranes ("Southern Blotting") 44
3.2.15 Labelling by random hexamer priming 44
3.2.16 Hybridisation of DNA probes labelled by random priming. 45
3.2.17 Labelling of oligonucleotides by polynucleotide kinase 45
3.2.18 Labelling of "overgo" probes 45
3.2.19 Hybridisation of oligonucleotides 46
3.2.20 Generation of amplified restriction fragments 46
3.2.21 Addition of T-overhangs in cloning vectors 47
3.2.22 Cloning of PCR products using the pAMP10 system 48
3.2.23 IRS-PCR 48
3.2.24 Amplification of plasmid inserts 49
3.2.25 DNA Sequencing 49
3.2.26 Radiation hybrid mapping of ESTs 49
3.2.27 Computational tools and bioinformatics 49
4 Results 51
4.1 IRS-PCR based methods for mapping the zebrafish genome 51
4.1.1 Analysis of the repetitive Mermaid/DANA element. 51
4.1.2 Identification of a new interspersed repetitive element in the zebrafish
genome 59
4.1.3 Tests of IRS-PCR Primers 64
4.1.4 Construction of an IRS marker library 66
4.1.5 Characterisation and normalisation of the IRS marker library by
oligonucleotide fingerprinting. 67
4.1.6 Characterisation of IRS-PCR products by sequence analysis 73
4.1.7 Radiation hybrid mapping of IRS-PCR products 76
4.1.8 High-density arrays of IRS products of pooled large-insert clones on
nylon membranes. 78
4.1.9 Detection of Single Nucleotide polymorphisms in orthologous IRS-PCR
products of different zebrafish strains. 83
4.2 Physical mapping of zebrafish linkage group 20 86
4.2.1 Mapping of PACs by hybridisation of oligonucleotides. 87
4.2.2 Mapping of PACs and YACs by hybridisation of IRS-PCR products 90
4.2.3 Assembly of the physical framework map of zebrafish linkage group 20 91
4.3 Radiation hybrid mapping of expressed sequence tags 94
4.4 Genetic mapping using amplified fragment length polymorphism (AFLP) 102
5 Discussion 105
5.1 IRS-based methods for mapping the zebrafish genome 105
5.1.1 Identification and testing of anchor sites for IRS-PCR 105
5.1.2 Size distribution of IRS-PCR products 106
5.1.3 Complexity of the IRS-PCR amplicon 107
5.1.4 Repeat and SNP content 107
5.1.5 IRS-PCR pools for physical mapping 107
5.1.6 Characterisation of a new interspersed repeat 108
5.2 Physical mapping of the zebrafish linkage group 20 109
5.2.1 Mapping strategy 110
5.2.2 Mapping results 110
5.2.3 Significance of the map 112
5.3 Radiation hybrid mapping 113
5.3.1 Mapping of ESTs with specific expression patterns during embryogenesis
113
5.3.2 ESTs homologous to human disease genes 114
5.3.3 Mapping and determination of conserved synteny 115
5.4 Conclusion and outlook 116
6 Summary 119
6.1 Abstract 119
6.2 Zusammenfassung 121
7 Appendix 123
7.1 STS markers used to generate oligonucleotide probes 123
7.2 Oligonucleotide probes for hybridisation on PAC filters 129
7.3 Primers for radiation hybrid mapping 134
7.4 Abbreviations 137
7.5 IUPAC-code of wobble nucleotides 139
7.7 Publications
8 Literature 140
dc.description.abstract
The zebrafish has been shown to be a powerful system for the genetic,
molecular and embryological study of vertebrate development. In spite of a
growing number of available genomic resources (genetic maps, radiation hybrid
maps, genomic libraries, cDNA libraries) the cloning of genes disrupted in
mutants is still difficult and time-consuming. The availability of physical
maps of the genome anchored to the genetic and radiation hybrid maps can
facilitate the identification and cloning of mutated genes and is crucial as a
framework for sequencing the genome. Gene catalogues containing expression and
mapping data of transcripts also help to identify candidate genes for
mutations and hence have the potential to enable the cloning of the affected
genes. The subject of this thesis is the establishment and application of
physical and radiation hybrid mapping techniques in the zebrafish genome. The
work can be divided in three parts: In the first part, interspersed repetitive
sequence (IRS)-PCR was adapted and optimised for the zebrafish system,
especially for physical and radiation hybrid mapping. Different repetitive
elements, primer annealing sites and PCR conditions were tested. A new
zebrafish repetitive element was identified and characterised. Libraries of
IRS-PCR products derived from 5 different zebrafish strains were constructed
and 27,000 clones were picked. The libraries were normalised and clustered by
oligonucleotide fingerprinting, suggesting 11,000 different IRS-PCR products
in the library. This method also identified IRS products with +/- polymorphism
among different zebrafish strains. IRS-PCR products were further characterised
by sequencing. The average frequency of single nucleotide polymorphisms (SNPs)
between IRS-PCR products of different strains tested was found to be p =
0.013. Thus IRS-PCR products can serve as a reduced representation subset of
the zebrafish genome for SNP mapping and detection. Radiation hybrid mapping
of IRS-PCR products was established. Part two describes the construction of a
physical framework map of zebrafish linkage group 20. A mapping procedure was
set up by hybridising STS-derived oligonucleotides on a PAC library, and by
hybridising IRS-products to YAC and PAC pools. So far, 344 STS derived
oligonucleotide probes and 284 IRS probes have been used. A total of 3416 PACs
were identified as positive, and are currently being restriction fingerprinted
for integration in the Tuebingen restriction fingerprinting map and for
selection of tiling paths for sequencing. A subset of the hybridisation
results was used for contig construction. This consisted of 388 probes,
hitting 2007 clones, representing a marker density of 1 per 205 kb. The contig
assembly resulted in 249 contigs, of which 19% were anchored by more than one
probe. These data agree with theoretical predictions. Thus, an STS-based
framework map of zebrafish chromosome 20 has been constructed, which is
anchored to genetic and radiation hybrid maps, and integrated in the
restriction fingerprint map. This is the first map of its kind of a zebrafish
chromosome. In the third part of this work zebrafish ESTs with homologies to
human disease genes or with localised expression patterns were mapped on the
radiation hybrid map. So far we mapped > 120 clones. The aim of this work is
to identify candidate genes for zebrafish mutations and to refine the map of
human:zebrafish syntenic relations; synteny data itself are used to determine
if sequences homologous between zebrafish and human are true orthologues.
de
dc.description.abstract
Der Zebrafisch ist ein wichtiger Modellorganismus für genetische, molekulare
und embryologische Untersuchungen der Embryonalentwicklung. Obwohl immer mehr
genomische Ressourcen zur Verfügung stehen (genetische Karten,
Bestrahlungshybridkarten, genomische Bibliotheken, cDNA Bibliotheken), ist die
Klonierung von Genen, die durch einer Mutante entdeckt wurden, schwierig und
zeitaufwendig. Eine physikalische Karte des Genoms, die mit genetischen und
Bestrahlungshybridkarten verankert ist, kann die Identifizierung und
Klonierung mutierter Gene erleichtern und dient als Grundlage für die
Sequenzierung des Genoms. Genkataloge mit Expressions- und Kartierungsdaten
sind entscheidend für die Auswahl von Kandidatengenen und ermöglichen daher
die Identifizierung mutierter Gene. Das Thema dieser Arbeit ist die
Entwicklung und Anwendung der physikalischen Kartierung und
Bestrahlungshybridkartierung im Zebrafisch. Die Arbeit gliedert sich in drei
Teile: Im ersten Teil wird beschrieben, wie die auf eingestreute repetitive
Elemente beruhende Polymerase-Kettenreaktion (IRS-PCR) an das Zebrafischgenom
angepaßt und optimiert wurde, insbesondere für die physikalische und
Bestrahlungshybridkartierung. Dazu wurden verschiedene repetitive Elemente,
Primerbindestellen und PCR Bedingungen getestet. Ein neuer Zebrafischrepeat
wurde gefunden und charakterisiert. Eine Markerbank aus IRS-PCR Produkten von
fünf Zebrafischstämmen wurde konstruiert, und 27.000 Klone wurden gepickt.
Diese Markerbanken wurden durch Oligunukleitid-Fingerprinting normalisiert,
wodurch etwa 11.000 verschiedene Sequenzen identifiziert werden konnten.
Dadurch wurden auch Produkte mit +/- Polymorphismus in den verschieden Stämmen
identifiziert. IRS-PCR Produkte wurden durch Sequenzierung näher
charakterisiert. Die Durchschnittsfrequenz von SNPs (single nucleotide
polymorphisms) beträgt p = 0.013. Aus diesem Grund ist unsere normalisierte
IRS-PCR Markerbank ein geeignetes repräsentatives Subset des Genoms für die
SNP-Detektion. Die Kartierung von IRS-PCR Produkten mittels der Hybridisierung
auf Bestrahlungshybride wurde ebenfalls entwickelt. Im zweiten Teil wurde eine
physikalische Rahmenkarte der Kopplungsgruppe 20 des Zebrafischs erstellt. Ein
Kartierungsverfahren wurde entwickelt, in dessen Verlauf kartierte
Oligonukleotide auf eine PAC-Bibliothek und IRS-Marker auf YAC- und PAC-Pools
hybridisiert wurden. Bis zum jetzigen Zeitpunkt wurden 344 Oligonukleotid- und
284 IRS Sonden verwendet. Insgesamt wurden 3416 PACs getroffen, die zur Zeit
durch Restriktions-fingerprinting analysiert werden. Dadurch werden sie in die
Tübinger Restriktionskarte integriert und ein Klonpfad für die genomische
Sequenzierung wird konstruiert. Ein Teil der Hybridisierungsergebnisse wurde
für die Konstruktion von Contigs verwendet. Dies umfaßte 388 Sonden, die 2007
Klone trafen, und damit eine Markerdichte von 1/205 kb repräsentieren. Das
Contigassembly besteht aus 249 Contigs, von denen 19% durch mehr als eine
Sonde verankert sind. Diese Daten stimmen mit der theoretischen Erwartung
überein. Auf diese Weise wurde eine physikalische STS-Rahmenkarte des
Chromosoms 20 des Zebrafischs erstellt, die mit den genetischen und
Bestrahlungshybridkarten verankert und in die Restriktionsfingerprintkarte
integriert ist. Dies ist die erste derartige Karte eines Zebrafischchromosoms.
Im dritten Teil dieser Arbeit wurden Zebrafisch ESTs, die humanen
Krankheitsgenen sequenzhomolog sind oder spezifische Expressionsmuster zeigen,
auf der Bestahlungshybridkarte positioniert. Bis jetzt wurden > 120 Klone auf
diese Weise kartiert. Ziel dieses Teils der Arbeit ist die Identifizierung von
Kandidatengenen für Zebrafischmutationen und die verfeinerte Kartierung der
Syntänieverhältnisse zwischen Mensch und Zebrafisch. Die Syntäniedaten dienen
zur Bestimmung, ob es sich bei homologen Sequenzen von Mensch und Zebrafish um
Orthologe oder Paraloge handelt.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
zebrafish genome mapping EST STS SNP
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.title
The zebrafish genome: Strategies and applications for physical and radiation
hybrid mapping
dc.contributor.firstReferee
Professor Dr. Hans Lehrach
dc.contributor.furtherReferee
Professor Dr. Volker Erdmann
dc.date.accepted
2002-05-29
dc.date.embargoEnd
2002-09-16
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-2002001680
dc.title.translated
Das Zebrafischgenom: Strategien und Anwendungen für die physikalische und
radiation hybrid Kartierung
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000000726
refubium.mycore.transfer
http://www.diss.fu-berlin.de/2002/168/
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000000726
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