dc.contributor.author
Schwartz, Benedikt
dc.date.accessioned
2018-06-08T00:46:39Z
dc.date.available
2012-02-28T11:13:43.836Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/12436
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-16634
dc.description
1\. Introduction 7 1.1. Formation of the vertebrate body 7 1.1.1. Early
gastrulation 8 1.1.2. Elongation of the A-P axis 11 1.1.3. Cellular events
during mesoderm development and axial elongation 13 1.2. The transcription
factor Srf 16 1.3. Diverse roles for Srf during embryonic development 20 1.4.
What role does Srf play during axial elongation? 22 2\. Results 24 2.1.
Identification of direct Srf target genes 24 2.1.1. Chromatin
Immunoprecipitation 24 2.1.2. Srf antibody ChIP 25 2.1.2.1. Establishment of
an in vitro Srf ChIP assay 26 2.1.2.2. Srf ChIP using embryonic tissue
resulted in insufficient enrichment 27 2.1.3. An alternative ChIP method:
Avi[Bio] ChIP in vitro 28 2.1.3.1. Srf-Avi[Bio] ChIP in vitro 30 2.1.3.2.
Comparison of Srf and Srf-Avi[Bio] targets 33 2.1.3.3. Identification of novel
Srf target genes in P19 cells 37 2.1.4. Srf-Avi[Bio] ChIP in vivo 39 2.1.4.1.
Generation of transgenic ES cells and mouse embryos for in vivo Srf-Avi[Bio]
ChIP 39 2.1.4.2. Srf-Avi[Bio] ChIP improves enrichment of Srf targets from
embryonic samples 44 2.1.4.3. ChIP-Seq analysis of embryonic Srf-Avi[Bio] ChIP
45 2.1.5. Chapter Summary 48 2.2. Identification and analysis of Srf-dependent
genes 50 2.2.1. Generation of conditional Srf knock out embryos 50 2.2.2.
Identification of dysregulated genes in conditional Srf knock out embryos 51
2.2.3. Identification of Srf-dependent genes during axis extension 55 2.2.4.
Srf-dependent genes are involved in cell migration 57 2.2.5. Analysis of
additional, novel putative Srf target genes 61 2.2.6. Chapter Summary 66 2.3.
Loss of Srf impairs migration behavior of nascent mesodermal cells 67 2.3.1.
Cells from Srf-deficient caudal ends display impaired motility ex vivo 67
2.3.2. In vivo analysis of impaired motility in Srf-deficient mesoderm 70
2.3.3. Analysis of Srfflex1/flex1; Msd Cre embryos 73 2.3.4. Chapter Summary
75 2.4. Involvement of Srf in FGF signaling during axial elongation 76 2.5.
Embryos with a mesoderm-specific knock out of Snai1 do not display axis
truncation Error! Bookmark not defined. 3\. Discussion 80 3.1. Srf activity is
essential for cell migration in nascent mesoderm cells 80 3.2. Axial
elongation requires migration of mesodermal cells 82 3.3. Srf cofactors during
axis extension 85 3.4. Additional roles for Srf-dependent genes during axis
extension 87 3.5. Connecting FGF signals and Srf activity during axis
extension 89 3.6. Egr1 upregulation in Srfflex1/flex1; Tstreak Cre embryos 90
3.7. Srf in conjunction with Brachyury activity 94 3.8. Identification of
novel Srf target genes 96 3.9. Streptavidin-Biotin mediated ChIP with in vivo
tissue 98 4\. Summary 101 5\. Zusammenfassung 102 6\. Contributions to the
experimental work 104 7\. Material and Methods 105 7.1. Mouse strains and
husbandry 105 7.2. Tissue culture 106 7.2.1. ES cell culture 107 7.2.2.
Generation of modified ES cells 107 7.2.3. In vitro differentiation of ES
cells 110 7.2.4. In vitro differentiation of P19 cells 111 7.2.5. Ex vivo
migration assay 111 7.2.6. FGF inhibition in tail half cultures 112 7.3.
Molecular Biology 113 7.3.1. Chromatin Immunoprecipitation 113 7.3.2. Analysis
of ChIP enrichment 114 7.3.3. Analysis of gene expression 115 7.4. Histology
117 7.4.1. Embryo preparation 117 7.4.2. Whole mount in situ hybridization 117
7.4.3. Immunofluorescence staining 117 7.5. Bioinformatic data analysis 119
8\. Abbreviations 120 9\. References 121 10\. Appendix 135 10.1. Supplementary
figures 135 10.2. ChIP-Seq data 139 10.3. Gene Expression data 146
dc.description.abstract
Following the process of gastrulation, the anterior posterior axis (A-P axis)
of the vertebrate embryo progressively elongates. Elongation is based on the
continous generation of mesodermal tissue by a growth zone in the caudal end
of the embryo, as well as the subsequent migration of newly generated
mesodermal cells. The transcription factor Serum Response Factor (Srf) was
previously shown to be expressed in the caudal end and nascent mesoderm of
mouse, chick, and frog embryos. The goal of this work was to identify its role
during axial elongation in the mouse. Conditional loss of Srf specifically in
the caudal end and nascent mesoderm resulted in mouse embryos that displayed
severe axis truncation. In order to identify Srf binding sites from embryonic
caudal ends, I modified a streptavidin-biotin affinity-based ChIP method for
in vivo application. In vivo and in vitro ChIP-Seq data were combined with
gene expression data, which had been generated using caudal ends from
conditional Srf KO embryos, to identify 27 genes that are directly regulated
by Srf during axial elongation. These genes included both previously known and
thus far unknown putative Srf target genes. Nearly all of them are associated
with cell migration, mainly with the reorganization of the actin cytoskeleton,
indicating that the main function of Srf in the process of axial elongation is
the regulation of cell motility. In accordance with the molecular data, ex
vivo migration assays revealed that Srf-deficient mesodermal cells displayed
impaired migration, accompanied by dramatic differences in the organization of
the actin cytoskeleton. In mutant embryos, Srf-deficient mesodermal cells
accumulated in the caudal end of the embryo instead of being spread along the
A-P axis, indicating that the lack of Srf results in impaired migration in
vivo. The accompanied axial truncation is in agreement with previous reports
which link impaired cell migration to defective axial elongation. It was
previously thought that Srf was involved in mediating FGF signaling during
axial elongation, however significant correlation between genes that are
directly regulated by Srf and genes that are regulated by FGF signaling was
not detected here. Altogether, work presented here strengthens the evidence
for the requirement of mesodermal cell migration during axial elongation, and
has identified Srf as a major player in executing the genetic program in the
process of migration.
de
dc.description.abstract
Nach dem Prozess der Gastrulation verlängert sich die anterior-posteriore
Achse (A-P Achse) kontinuierlich. Die Verlängerung basiert auf der
fortlaufenden Generierung von mesodermalem Gewebe durch eine Wachstumszone im
kaudalen Ende des Embryos, sowie der anschliessenden Migration der neu
entstandenen mesodermalen Zellen. Der Transkriptionsfaktor Serum Response
Factor (Srf) ist im kaudalen Ende sowie im entstehenden Mesoderm von Maus-,
Huhn- und Froschembryonen exprimiert. Ziel dieser Arbeit war es, die Rolle von
Srf während der Achsenverlängerung in der Maus zu identifizieren. Die
konditionale Inaktivierung von Srf spezifisch im kaudalen Ende und dem
entstehenden Mesoderm resultierte in Maus-Embryonen, die einen schwerwiegenden
Achsenabbruch aufwiesen. Für die Identifizierung von Srf-Bindestellen im
embryonalen kaudalen Ende habe ich eine auf Streptavidin-Biotin-Affinität
beruhende ChIP-Methode modifiziert, um sie in vivo anwenden zu können. In vivo
und in vitro ChIP-Seq-Daten wurden mit Expressionsdaten kombiniert, die aus
kaudalen Enden der konditionalen Knockout Embryonen gewonnen wurden. Dies
führte zur Identifizierung von 28 Genen, die während der Achsenverlängerung
direkt von Srf reguliert werden. Diese Gene beinhalteten sowohl bereits
bekannte sowie bisher unbekannte mutmaßliche Srf-Zielgene. Der Großteil dieser
Gene wird mit Zellmigration assoziiert, vorallem mit dem Umbau des Aktin-
Zytoskeletts, was darauf hindeutete, dass die Hauptfunktion von Srf während
der Achsenverlängerung die Regulierung der Zellbeweglichkeit ist.
Übereinstimmend mit den molekularen Daten wiesen Srf-defiziente mesodermale
Zellen eine beeinträchtigte Migration in ex vivo-Migrationsanalysen auf, die
mit drastischen Abweichungen in der Struktur des Aktin-Zytoskeletts
einhergingen. In Mutanten sammelten sich Srf-defiziente mesodermale Zellen im
kaudalen Ende der Embryonen an, anstatt sich entlang der A-P Achse
auszubreiten, was darauf hinweist, dass das Fehlen von Srf zu einer
Beeinträchtigung der Migration in vivo führt. Der damit einhergehende
Achsenabbruch ist in Übereinstimmung mit Berichten, die eine beeinträchtigte
Zellmigration mit ausbleibender Achsenverlängerung verbinden. Es wurde
vermutet, dass Srf an der Vermittlung von FGF-Signalen während der
Achsenverlängerung beteiligt ist, jedoch konnte im Rahmen dieser Arbeit keine
signifikante Korrelation zwischen Srf-regulierten und FGF-regulierten Genen
festgestellt werden. Diese Arbeit bestätigte, dass Migration mesodermaler
Zellen notwendig für die Achsenverlängerung ist, und hat Srf als einen
wichtigen Faktor für die Durchführung des dafür verantwortlichen genetischen
Programms identifiziert.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
Serum Response Factor
dc.subject
Cell migration
dc.subject
Axial Elongation
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.title
Migration of Mesodermal Cells and Axial Elongation in Mouse Embryos Depend on
the Serum Response Factor
dc.contributor.contact
bschwart@molgen.mpg.de
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Bernhard G. Herrmann
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Stephan Sigrist
dc.date.accepted
2012-01-17
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000036144-9
dc.title.translated
Die Migration mesodermaler Zellen und die Achsenverlängerung in Mausembryonen
benötigen den Serum Response Faktor
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000036144
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000010692
dcterms.accessRights.dnb
free
dcterms.accessRights.openaire
open access