dc.contributor.author
Khalifa, Engy
dc.date.accessioned
2018-06-07T23:29:48Z
dc.date.available
2013-06-17T08:29:22.897Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/10560
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-14758
dc.description
1 Introduction 1 1.1 An overview over biological stresses and crop
yield………………………………. 1 1.1.1 Cold stress of
plants..............................................................................3
1.1.1.1 Freezing stress………………………………………………………………………...3 1.1.1.1.1 Freeze-
induced dehydration…………………………………………………3 1.2 Cold
acclimation…………………………………………………………….. 7 1.2.1 Cold responsive
genes............................................................................11
1.2.1.3 Evolution and adapative duplications in genes in Brassica
(Brassicaceae)…12 1.2.1.4 Cold responsive genes with known
function………………………………………….15 1)
Cryoporotectin……………………………….............................................15 2)
COR6.6, COR15, BN26 and BN115………………………………………………17 1.3Aim of the
study................................................................................
…21 3 Materials and
Methodes..............................................................................23.
3.1Materials………………………………………………………………………………. ….23
3.1.1PlantMaterial…………………………………………………………………….......23
3.1.1.1Spinach………………………………………………………………………...............23
3.1.1.2Cabbage………………………………………………………………………..............23
3.1.2Chemicals………………………………………………………………………..............24
3.1.3Equipment.............................................................................................23
3.1.4Consumbles............................................................................................25
3.1.5 Kits……………………………………………………………………………............................... 25
3.1.6 Genes………………………………………………………………………………......................... 26 3.1.7
Antibodies…………………………………………………………………………....................... 26 3.1.9
Plasmids...............................................................................................2
3.1.10 Pichia pastoris
culture.....................................................................
28 3.1.11 Protein
Marker.............................................................................
28 3.2
Methods...................................................................................................29
3.2.1.1Expression of recombinant Protein in Pichia pastoris………………………….30
3.2.1.2 Centrifugation and storage……………………………………………………33 3.2.1.3 Purification
of BN26 by reverse-phase chromatography using Amberlite
XAD7…………………………………………………………………………………33 3.2.1.4 Protein
desalting………………………………………………………………34 3.2.1.5 Protein
precepitation..................................................................36
3.2.1.6 Colorimetric determination of protein concentration by Bradford
test...............................................................................................................36
3.2.1.7 SDS-Polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE)……………………...37 3.2.1.8
Western
blot....................................................................................40
3.2.1.8.1 Protein transfer to a nitrocellulose membrane………………………………40
3.2.1.8.2 Ponceau staining…………………………………………………………41 3.2.1.8.3 Blocking of the
free surfaces of the membranes. …………………………41 3.2.18.4 Development: staining of
the bound protein............42 3.2.1.9 Isolation of Thylakoids and
Cryoptotectin protein…………………………...43 3.2.1.9.1Isolation of thylakoid membranes
from non-hardened spinach. ……………43
3.2.1.9.1.1Chlorophyllestimation......................................................................43
3.2.1.10 Cryoprotective activity of BN26…………………………………….............45
3.2.1.11Binding activity of BN26 with Thylakoid Membranes……………………….48 3.2.1.12
ProteaseSensitivity Assay…………………………………………………...51 3.2.1.13 Refolding
(Chaperone) activity assay of BN26……………………………51 3.2.1.14 In vitro assays to
measure lactate dehydrogenase stabilization under different stresses
……………………………………………………………………………………….53 3.2.1.15 Pull-down
assay……………………………………………………………………..54 3.2.2 Biophysical
Methods……………………………………………………………………55 3.2.2.1 Circular dichroism spectroscopy
(CD)………………………………………..55 3.2.2.2Liposomeformation…………………………………………………………………...58
3.2.2.3 Effect of Freezing on liposome leakage………………………………………59 Staistical
analysis……………………………………………………………………………...................61 4
Results....................................................................................
62 4.1Expression of recombinant BN26 protein in Pichia pastoris…………………………63
4.2Purification of BN26 by reverse-phase
chromatography..........................................65 4.3Isolation and
purification of Cryoprotectin from cabbage………………………….66 4.4 Biochemical and
biophysical analysis of BN26…………………………………….69. 4.4.1Secondary structure
determination via circular dichroism (CD) spectroscopy
measurements………………………………………………………………………………..69 4.4.2 Protease sensitivity
assay………………………………………………………………71 4.4.3 Cryoprotective activity of
BN26…………………………………………………. 77 4.4.4.Cryoprotective activity of BN26 is
correlated to protein concentration………........80 4.4.5 Cryoprotective activity
in the presence of combinations of different additives……...82 4.4.6 BN26
binding to the thylakoid membrane…………………………………………….84 4.4.7 Interaction of the
BN26 protein with liposomes in a thylakoid membrane
model…………………………………………………………………………………………88 4.4.8 Refolding activity of
BN26……………………………………………………........... 91 4.4.9 In vitro assays to measure
lactate dehydrogenase stabilization under different
stresses……………………………………………………………………………….93 4.4.9.1Cryoprotection of LDH against
freeze-thaw inactivation.............................................93
4.4.9.2 Cryoprotection of LDH against inactivation by repeated freeze-thaw
cycles………………………………………………………………………………...95 4.4.9.3 Dehydration stress
protection assays………………………………………………..97 4.4.9.4 Effect of BN26 on LDH
refolding
activity.................................................................99
4.10 Pull-down
assay.........................................................................................................
100
5Discussion............................................................................................
101 5.1 The role of COR and similar hydrophilic polypeptides in freezing
tolerance..............103 5.2 CD analysis and proteolytic sensitivity of
BN26……………………………………….103 5.2.1 Stress-induced structural changes in
BN26…………………………………………..104 5.3 BN26 Function………………………………………………………………………106
5.3.1Can BN26 enhance membrane
stability?.......................................................................106
5.3.1.1Can BN26 protect thylakoid membranes from freeze-induced
damage?.............. 106 5.3.1.2 Does BN26 protect liposomes from freeze-
induced dehydration damage... ...........106.. 5.3.2Can BN26 enhance protein
stability and recover enzyme activity?...................109
6Summary.............................................................................................................................114
Zussamenfassung 116 7 References 119
dc.description.abstract
Cold acclimatization of plants is a multigenic trait during which multiple
genes are expressed. One of the Arabidopsis thaliana cryoprotectant protein
COR15A homologues in Brassica napus or Brassica oleracea with unknown function
is BN26. The gene for BN26 was cloned from Brassica oleracea and expressed in
Pichia pastoris as a native protein without signal sequence and purified by
reverse phase chromatography on Amberlite XAD7. A significant advantage
offered by the use of the Amberlite XAD7 matrix is that the dried protein
fractions can be stored without loss of activity for up to 4 to 6 months in
the refrigerator and for one year in the freezer. One main result obtained in
this PhD thesis was the lack of secondary structural elements of BN26 in
solution together with stress-induced folding of new secondary structure
elements. Structural analysis via circular dichroism spectroscopy experiments
revealed the folding of natively unstructured BN26 proteins during drying to
mainly α-helical structure. Another diagnostic feature for unstructured
proteins is their high proteolytic sensitivity. The higher protease
sensitivity of unstructured proteins results from their open structure.
Therefore, the polypeptide chain of unstructured proteins is more accessible
to proteases than that of globular proteins. For BN26 sensitivity to
proteolytic degradation could be shown, pointing to the flexible nature. In
contrast, the globular protein lysozyme remains intact under the same
conditions. Further characterization in my thesis was done to enlighten the
mode of action of BN26 protein. Thereby, both membrane and protein
stabilization properties under stress were suggested as a possible mechanism
of protection. BN26 protected thylakoids against freeze-thaw damage by binding
to thylakoid membranes as shown by western blot analysis. Interestingly, BN26
shows in comparison to its high cryoprotecting ability for whole thylakoids
just poor cryprotection ability for liposomes mimicking thylakoid membrane.
Furthermore, BN26 has been shown to exhibit in vitro cryoprotective activity
on the freezing-labile enzyme, L-lactate dehydrogenase (LDH), against freeze-
induced inactivation in vitro. The protection of proteins during drying on an
LDH-assay could also be shown for BN26 protein. In addition we examined the
refolding activity of BN26 using firefly luciferase as a substrate. BN26 was
found to stimulate folding of the molecule indicating a chaperone activity of
BN26. In conclusion our data indicate that BN26 functions as protectant
against various stresses. Furthermore I could show in pull-down assays that
only stress treated BN26 but not unstressed BN26 can bind to LDH. This is
interesting regarding the fact that secondary structure elements in BN26 are
formed via stress treatment. I suggest that the structural changes of BN26 are
necessary for binding to potential targets and even more for its function as
protectant against various stresses.
de
dc.description.abstract
Bei der Kälteakklimatisation von Pflanzen spielen eine Vielzahl von Genen eine
Rolle. Diese Arbeit untersucht das bis dahin funktionell nicht beschriebene
Protein BN26. Das Brassica napus und Brassica oleracea Protein BN26 ist
homolog zu dem Arabidopsis Frostschutz Protein COR15A. Die kodierende Sequenz
von BN26 wurde aus Brassica oleracea isoliert. Die Expression erfolgte als
natives Protein ohne Signalsequenz in Pichia pastoris. Die anschließende
Aufreinigung erfolgte mittels Umkehrphasenchromatographie unter Verwendung
einer Amberlite XAD7 Matrix. Ein wesentlicher Vorteil bei der Verwendung der
Amberlite XAD7 Matrix ist, dass die getrockneten Proteinfraktionen ohne
Aktivitätsverlust 4 bis 6 Monate im Kühlschrank und ein Jahr im Gefrierschrank
gelagert werden können. Ein Hauptresultat dieser Arbeit ist das Fehlen von
Sekundärstrukturelementen im gelösten BN26 und die stressabhängige Ausbildung
neuer Sekundärstrukturen. In der Charakterisierung der BN26 Sekundärstruktur
mittels Zirkulardichroismus-Spektroskopie konnte ein hoher Anteil an
ungefalteten Proteinregionen im gelösten BN26 und eine dem Wasserentzug
folgende deutliche Zunahme an α-Helices beobachtet werden. Ein anderes
Verfahren zum Nachweis von Proteinen mit einer großen Anzahl an
unstrukturierten Bereichen in der Sekundärstruktur macht sich die
Empfindlichkeit solcher unstrukturierten Proteinbereiche gegenüber Proteasen
zunutze. Die höhere Protease-Empfindlichkeit von unstrukturierten Proteinen
ergibt sich aus ihrer offenen Struktur. Die Protease kann an die
Polypeptidkette von unstrukturierten Proteinen deutlich besser binden als an
die von globulären Proteinen. Es gelang für gelöstes BN26 eine hohe
Proteasesensitivität nachzuweisen, was auf einen hohen Anteil an
unstrukturierten Proteinregionen hindeutet. Im Gegensatz dazu war unter den
gleichen experimentellen Bedingungen für das globuläre Proteins Lysozym ein
deutlich höherer Anteil des gesamten Proteins intakt und unverdaut. Eine
weitere Charakterisierung von BN26 im Rahmen meiner Doktorarbeit diente der
funktionellen Untersuchung. Als mögliche Mechanismen des abiotischen
Stressschutzes wurden die Stabilisation von Membranen und Proteinen
diskutiert. Für BN26 konnte eine Funktion beim Schutz von Thylakoiden gegen
Frost-Tau-Schäden und eine Bindung an Thylakoidmembranen durch Western-Blot-
Analyse gezeigt werden. Interessanterweise konnte im Gegensatz zum Frostschutz
von Gesamt-Thylakoiden nur ein geringer Frostschutz von Liposomen, die als
Modell für Thylakoidmembranen verwendet wurden, durch BN26 beobachtet werden.
Des Weiteren schützte BN26 das kälteempfindliche Enzym L-Lactatdehydrogenase
(LDH) beim Einfrieren in vitro vor einem Aktivitätsverlust. Auch bei
Wasserentzug durch Trocknen konnte eine schützende Funktion von BN26 für LDH
gezeigt werden. Zudem konnte für das Substrat Luciferase gezeigt werden, dass
BN26 die Faltung von Proteinen stimuliert, was auf eine Funktion als Chaperon
hinweist. Die Daten zeigen eine Funktion von BN26 als abiotisches Stress-
Schutzprotein auf. Außerdem konnte ich in Pull-Down Untersuchungen zeigen,
dass nur Stress-behandeltes BN26 Protein, aber nicht "ungestresstes" BN26 LDH
binden kann. Das ist interessant im Hinblick auf die Tatsache, dass durch
Stress-Behandlung sekundäre Strukturelemente in BN26 gebildet werden. Ich
schlage vor, dass die strukturellen Veränderungen in BN26 notwendig für die
Bindung an potenzielle Ziele und noch mehr für seine Funktion als Schutzmittel
gegen verschiedene Stressfaktoren sind.
en
dc.format.extent
XII, 131 S.
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
cold-regulated
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::580 Pflanzen (Botanik)
dc.title
Characterization of a Low Temperature Inducible Protein (BN26)
dc.contributor.contact
salma@zedat.fu-berlin.de
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Jürgen. M. Schmitt
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Rupert Mutzel
dc.date.accepted
2013-06-07
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000094493-2
dc.title.translated
Charakterisierung des Tieftemperatur-induzierten Proteins BN26
en
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000094493
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000013581
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open access