dc.contributor.author
Chaimowicz, Charlotte
dc.date.accessioned
2018-06-07T23:25:37Z
dc.date.available
2016-04-08T08:44:11.976Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/10475
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-14673
dc.description
1\. INTRODUCTION 1 1.1. FUNCTION OF MOTOR NEURONS 1 1.1.1. MOTOR NEURONS
CONTROL MUSCLE CONTRACTION 1 1.1.2. MOTOR NEURON DIVERSITY IN THE SPINAL CORD
1 1.1.3. INNERVATION OF LIMB MUSCLES 3 1.1.4. INNERVATION OF THE DIAPHRAGM BY
PHRENIC NERVES 4 1.1.5. SPECIFICITY OF CRANIAL MOTOR NERVE INNERVATION 5
1.1.6. INNERVATION OF THE TONGUE BY THE HYPOGLOSSAL NERVE 7 1.2. DEVELOPMENT
OF MOTOR NEURONS 10 1.2.1. SPECIFICATION OF NEURAL TISSUE AND ANTERO-POSTERIOR
PATTERNING 10 1.2.2. DORSO-VENTRAL SIGNALS AND THE GENERATION OF THE MOTOR
NEURON IDENTITY 10 1.2.3. HOX GENES AND SPECIFICATION OF MOTOR NEURON SUBTYPES
12 1.2.4. HINDBRAIN MOTOR NEURON SPECIFICATION 14 1.2.5. MOTOR AXON
PATHFINDING AND ESTABLISHMENT OF NEUROMUSCULAR JUNCTION 14 1.3. THE TEASHIRT
GENE FAMILY 15 1.3.1. ROLE OF TSH IN DROSOPHILA 15 1.3.2. TEASHIRT ORTHOLOGUES
IN MICE 17 1.3.3. TSHZ1 FUNCTIONS IN VERTEBRATES 18 1.4. AIM OF THE STUDY 19
2\. MATERIALS AND METHODS 21 2.1. MATERIALS 21 2.1.1. CHEMICALS 21 2.1.2.
BACTERIAL STRAINS 21 2.1.3. ANTIBODIES 22 2.1.4. MOUSE STRAINS 23 2.1.5.
SOLUTIONS AND BUFFERS 24 2.1.5.1. Solutions 24 2.1.5.2. Commonly used buffers
25 2.1.5.3. Bacterial culture 26 2.1.5.4. Buffers used for whole-mount in situ
hybridization 26 2.1.5.5. Buffers for X-gal staining 27 2.1.5.6. Buffers for
immunostaining 28 2.1.5.6.1. Immunohistochemistry on sections 28 2.1.5.6.2.
Whole-mount diaphragm staining 28 2.1.5.6.3. Whole-mount staining of tongues
29 2.2. METHODS 29 2.2.1. EXTRACTION AND PURIFICATION OF NUCLEIC ACIDS 29
2.2.1.1. Isolation of plasmid DNA 29 2.2.1.2. Isolation of genomic DNA from
mouse tissue 30 2.2.1.3. Polymerase chain reaction (PCR) 30 2.2.2. GENERATION
OF RIBOPROBES FOR IN SITU HYBRIDIZATION 35 2.2.3. WHOLE-MOUNT IN SITU
HYBRIDIZATION 35 2.2.4. DISSECTION AND FIXATION OF MOUSE TISSUE 37 2.2.5.
PREPARATION OF FROZEN SECTIONS 37 2.2.6. HEMATOXYLIN-EOSIN STAINING 38 2.2.7.
X-GAL STAINING 39 2.2.8. IMMUNOCHEMISTRY ON SECTION 39 2.2.9. WHOLE-MOUNT
DIAPHRAGM STAINING 39 2.2.10. WHOLE-MOUNT TONGUE STAINING 40 2.2.11. IMAGING
AND ANALYSIS 41 2.2.11.1. Imaging of in situ hybridization, X-gal and HE
staining 41 2.2.11.2. Confocal imaging 41 2.2.11.3. Counting of motor neuronal
populations 41 2.2.11.4. Branching analysis 42 3\. RESULTS 43 3.1. TSHZ1
EXPRESSION IN MOTOR NEURONS 43 3.1.1. RNA EXPRESSION OF TSHZ1 43 3.1.2.
ANALYSIS OF TSHZ1 EXPRESSION IN MOTOR NEURONS 45 3.2. MUTATION OF TSHZ1 IN
MOTOR NEURONS LEADS TO NEONATAL LETHALITY 51 3.2.1. CONDITIONAL MUTATION OF
TSHZ1 IN MOTOR NEURONS USING OLIG2CRE ALLELE 51 3.2.2. TSHZ1MN∆ MUTANTS DIE ON
THE FIRST DAY AFTER BIRTH 53 3.2.3. TSHZ1MN∆ MUTANTS DO NOT HAVE MALFORMATION
OF THE ORAL CAVITY 54 3.2.4. THE HYPOGLOSSAL NUCLEUS IS SMALLER AND
HYPOGLOSSAL NERVE BRANCHING IS IMPAIRED IN TSHZ1MN∆ MUTANTS 56 3.2.5. THE
PHRENIC MOTOR COLUMN IS REDUCED AND PHRENIC NERVE BRANCHING IS IMPAIRED IN
TSHZ1MN∆ MUTANTS 59 3.2.6. OTHER MOTOR COLUMNS ARE NOT AFFECTED IN TSHZ1MN∆
MUTANTS 63 4\. DISCUSSION 65 4.1. IDENTIFICATION OF TSHZ1-EXPRESSING MOTOR
NEURONS 65 4.2. TSHZ1 EXPRESSION IN MOTOR NEURONS IS REQUIRED FOR FEEDING AND
NORMAL BREATHING 67 4.1. TSHZ1 IS NECESSARY FOR SURVIVAL OF HYPOGLOSSAL MOTOR
NEURONS AND CORRECT INNERVATION OF THE TONGUE 68 4.2. TSHZ1 IS NECESSARY FOR
THE SURVIVAL OF PHRENIC MOTOR NEURONS AND CORRECT DIAPHRAGM INNERVATION 69
4.3. SPECIFIC ROLE OF TSHZ1 IN HYPOGLOSSAL AND PHRENIC MOTOR NEURONS 71 4.4.
PERSPECTIVES 71 5\. SUMMARY 73 6\. ZUSAMMENFASSUNG 74 7\. REFERENCES 76 8\.
EIDESSTATTLICHE ERKLÄRUNG 85
dc.description.abstract
Motor neurons (MNs) relay between the central nervous system and muscles, and
eventually trigger muscle contraction. Motor neurons cluster in the brainstem
and spinal cord according to the target muscles they are innervating. Tshz1, a
member of the teashirt zinc finger family of transcription factors, is
strongly expressed in the central nervous system of the mouse during
development and adulthood. However, Tshz1 expression and function during motor
neuron development had not been addressed. I defined the precise spatio-
temporal expression pattern of Tshz1 in hindbrain and spinal motor neurons
using in situ hybridization and immunological detection of GFP that was
expressed from a Tshz1GFP allele. Tshz1 was expressed exclusively by
postmitotic somatic motor neurons. Hypoglossal and phrenic MNs expressed Tshz1
strongly and persistently, and MNs of the lateral motor columns in the
cervical and lumbar spinal cord expressed Tshz1 transiently. Next, I generated
mice that lack Tshz1 specifically in somatic motor neurons (Olig2Cre/+;
Tshz1flox/∆, subsequently called Tshz1MN∆). Tshz1MN∆ pups were born in
Mendelian ratio but died on the day of birth. Tshz1MN∆ pups had no milk in
their stomach, air in their gastrointestinal tract and they gasped and were
mildly cyanotic. I assessed the integrity of several motor nuclei/columns in
Tshz1MN∆ animals by staining and counting MNs in the hindbrain and spinal
cord. Interestingly, the number of motor neurons in the hypoglossal nucleus
and in the phrenic motor column, which innervate tongue muscles and the
diaphragm, respectively, was reduced at birth. Motor neurons in both nuclei
were born in correct number but increased numbers died subsequently by
apoptosis. Labeling of the nerves (neurofilament NF200 staining and Hb9GFP
allele) revealed that hypoglossal and phrenic nerves both displayed aberrant
branching patterns. The numbers of spinal motor neuronal populations were
unaffected by Tshz1 mutation. Altogether, my results demonstrate that Tshz1 is
required for survival of specific motor neuron subtypes and for the branching
of their efferent nerves. I propose that the deficits in these motor neurons
cause the changes in feeding and breathing behaviors that are observed in
Tshz1MN∆ mutants.
de
dc.description.abstract
Motoneurone sind eine Schaltstelle zwischen dem Zentralnervensystem und der
Muskulatur und können die Muskelkontraktion auslösen. Motoneurone sind
topologisch organisiert, d.h. sie sind in Gruppen im Hirnstamm und Rückenmark
lokalisiert und jede der Gruppen innerviert einen bestimmten Muskel. Tshz1,
ein Mitglied der teashirt Familie von Zinkfinger Transkriptionsfaktoren, wird
im Zentralnervensystem der Maus während der Entwicklung und im adulten Stadium
stark ausgeprägt. Die Expression und Funktion von Tshz1 während der
Entwicklung der Motoneurone war bisher nicht untersucht worden. Zuerst habe
ich das genaue räumlich-zeitliche Expressionsmuster von Tshz1 in Motoneuronen
des Rhombenzephalons und des Rückenmarks definiert. Tshz1 ist ausschließlich
in postmitotischen somatischen Motoneuronen exprimiert: Motoneurone der
hypoglossalen und phrenischen Nerven im Rhombenzephalon bzw. zervikalen
Rückenmark exprimieren Tshz1 stark und persistent. Motoneurone der lateralen
Motorsäule im zervikalen und lumbalen Rückenmark exprimieren Tshz1 transient.
Anschließend haben ich Tshz1 mutante Mäuse generiert, in denen Tshz1
spezifisch in somatischen Motoneuronen mutiert wurde (Olig2Cre/+; Tshz1flox/∆
Tiere, die im weiteren Tshz1MN∆ genannt werden). Tshz1MN∆ Jungtiere wurden im
erwarteten mendelschen Verhältnis geboren, starben aber noch am Tag der
Geburt. Tshz1MN∆ Jungtiere hatten keine Milch im Magen und Luft im
gastrointestinalen Trakt. Außerdem zeigten sie Schnappatmung und eine
bläuliche Körperfarbe. Ich analysierte die Integrität mehrerer Kerne und
Säulen von Motoneuronen im Rhombenzephalon und Rückenmark von Tshz1MN∆ Tieren,
in dem ich Motoneurone anfärbte und ihre Anzahl bestimmte. Die Anzahl der
Motoneurone im Nucleus hypoglossus und Nucleus phrenicus, welche die Muskeln
der Zunge beziehungsweise des Zwerchfells innervieren, waren zum Zeitpunkt der
Geburt reduziert. Motoneurone beider Kerne/Säulen wurden in korrekter Anzahl
angelegt und starben anschließend. Die Anfärbung der Nerven (Neurofilament
NF200 Färbung und Hb9GFP Allel) zeigte, dass sowohl hypoglossale als auch
phrenische Nerven ein verändertes Verzweigungsmuster aufwiesen. Andere
Motoneuronpopulationen (laterale Motorsäule des zervikalen und lumbalen
Rückenmarks) waren durch die Mutation von Tshz1 nicht beeinträchtigt. Zusammen
demonstrieren meine Ergebnisse, dass Tshz1 für das Überleben von spezifischen
Subtypen von Motoneuronen notwendig ist und die korrekte
Innervation/Verzweigung der entsprechenden efferenten Nerven moduliert. Ich
schlage vor, dass die Veränderungen im Säuge- und Atmungsverhalten von Tshz1
mutanten Tieren durch die Fehlbildung der hypoglossalen und phrenischen Nerven
verursacht wird.
de
dc.format.extent
iii, 85 Seiten
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
hypoglossal nerve
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.title
The role of teashirt 1 during motor neuron development
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Carmen Birchmeier
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Fritz Rathjen
dc.date.accepted
2016-03-01
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000101671-4
dc.title.translated
Die Funktion des Teashirt-1-Gens in der Motorneuronen-Entwicklung
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000101671
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000018909
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free
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open access