dc.contributor.author
Gaiser, Olaf J.
dc.date.accessioned
2018-06-07T15:24:27Z
dc.date.available
2007-05-21T00:00:00.649Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/1019
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-5221
dc.description
Contents Page
Title and Table of Contents
Preface i
Zusammenfassung ii
Abbreviations v
Chapter 1 - Introduction: Signaling Networks in Living Cells 1
Chapter 2 - Methods and Experimental Strategy 17
Chapter 3 - Solution NMR Structure of the Second BRCT Domain from Human BRCA1
29
Chapter 4 - Structural Basis for the Substrate Specificity of a Bacillus
1,3-1,4-β-Glucanase 43
Chapter 5 - Summary, Final Remarks and Publications 50
Appendix - Principles of Protein Structure and Function 84
References 112
Acknowledgements / Danksagung 120
Publications
Pub1 - Resonance Assignments of the C-terminal BRCT Domain from Human BRCA1
Pub2 - Solution Structure, Backbone Dynamics, and Association Behavior of
BRCT-c
Pub3 - Structural Basis for the Substrate Specificity of a Bacillus
1,3-1,4-β-Glucanase
dc.description.abstract
This research work is a two-part structural biological study, comprising (i)
the BRCT region of the human cell-cycle checkpoint protein BRCA1, and (ii) the
Bacillus 1,3-1,4-β-glucanase H(A16-M) as scientific subjects. Chapter 1 is a
general introduction to molecular cell biology with a focus on cell-cycle
regulation, DNA damage signaling and cancer development. Chapter 2 describes
the biochemical and structural biological methods with an emphasis on both the
rational background and the experimental strategy. Chapter 3 shows the
solution NMR structure of the second BRCT domain from BRCA1, whereas Chapter 4
describes the high-resolution crystal structure of H(A16-M) in complex with a
natural carbohydrate ligand. Chapter 5 comprises the summary and corresponding
publications. The Appendix represents a brief introduction to protein
structure and function. It provides additional information with the focus on
new developments in structural biology and related fields.
The first part (Chapter 3) relates to molecular cloning and structural
characterization of the BRCT region of human BRCA1. BRCT domains are key
components of BRCA1 and other DNA-damage responsive cell-cycle checkpoint
proteins. Cell biological and biochemical studies have shown that BRCT tandem
repeats may activate transcription and bind phosphorylated peptide motifs,
thereby mediating the assembly of protein complexes and the activation of
cell-cycle checkpoints. In this study, the BRCT domains boundaries were
assessed by proteolytic dissection, and the 3D structure of the isolated
second BRCT domain (BRCT-c) was determined by solution NMR spectroscopy to
elucidate the basis for the observed cellular functions. The results showed
for the first time that single BRCT domains may fold properly even in the
absence of an intramolecular BRCT tandem partner. Comparison with the crystal
structure of the BRCT double repeat revealed that two helices (α1 and α3)
slightly reorient in the absence of the first BRCT domain (BRCT-n). This
structural deviation suggests, together with previous functional and
mutagenesis data, that BRCT-n may possibly modulate the transcriptional
activation function of BRCT-c. This raises the intriguing possibility of
allosteric cross-talk between the two BRCT domains and, by that, precise fine-
tuning of structure and function through direct interactions at the BRCT
interface.
In the second part (Chapter 4), the interactions of the Bacillus
1,3-1,4-β-glucanase H(A16-M) with a natural saccharide substrate are analyzed
by means of X-ray crystallography. 1,3-1,4-β-glucanases are highly specific
enzymes that cleave β-1,4 glycosidic bonds in 3-O-substituted glucopyranosyl
units. The crystal structure shows four β-D-glucosyl units
(Glcβ4Glcβ4Glcβ3Glc) bound in the substrate binding cleft, corresponding to
the non-covalent enzyme-product (E P) complex. The high resolution (1.64 Å)
allows unambiguous determination of sugar configuration, conformation and
linkage-type. Compared to the Michaelis complex model, the tetrasaccharide
ligand is slightly shifted toward that part of the cleft binding the non-
reducing end of the substrate, but shows previously unanticipated strong
stacking interactions with Phe92 in the catalytic subsite I. Structure
analysis of the E P complex provides new insights into the structural basis of
carbohydrate binding and processing, and allowed conclusions about the
molecular basis for product release.
de
dc.description.abstract
Diese strukturbiologische Forschungsarbeit beschäftigt sich mit (i) der BRCT-
Region des humanen Proteins BRCA1, und (ii) der 1,3-1,4-β-glucanase H(A16-M)
aus Bacillus. Kapitel 1 ist eine allgemeine Einführung in die molekulare
Zellbiologie, wobei Zellzyklus-Regulation und Krebsentstehung besondere
Beachtung finden. Kapitel 2 beschreibt die Methoden und erläutert die
experimentelle Strategie. Kapitel 3 zeigt die NMR-spektroskopische
Strukturanalyse der zweiten BRCT Domäne von BRCA1. Kapitel 4 beschreibt die
Kristallstruktur von H(A16-M) im Komplex mit einem natürlichen Saccharid-
Liganden. Kapitel 5 beinhaltet die Zusammenfassung der Arbeit und die
dazugehörigen Publikationen. Der Anhang (Appendix) besteht aus einer kurzen
Einführung zur Struktur und Funktion von Proteinen. Darin enthalten sind
zusätzliche Informationen über neuere Entwicklungen im Bereich der
Strukturbiologie und verwandten Forschungsfeldern.
Der erste Teil (Kapitel 3) umfasst die Klonierung und strukturelle
Charakterisierung der BRCT-Region von BRCA1, um so die Grundlagen für die
zellulären Funktionen besser zu verstehen. BRCT-Domänen sind
Schlüsselkomponenten von BRCA1 und anderen Proteinen, die in Reaktion auf DNA-
Schädigung den Zellzyklus regulieren. Verschiedene Studien haben gezeigt, dass
die beiden BRCT-Domänen von BRCA1 transkriptionsaktivierend wirken und mit
hoher Affinität an phosphorylierte Peptidmotive binden. Dies ermöglicht die
Assemblierung von Proteinkomplexen und die Aktivierung von Zellzyklus-
Kontrollmechanismen. In dieser Arbeit wurden die BRCT-Domänengrenzen durch
limitierte Proteolyse ermittelt und die 3D-Struktur der isolierten zweiten
BRCT-Domäne (BRCT-c) in Lösung mit NMR-spektroskopischen Methoden bestimmt.
Dadurch konnte zum ersten mal gezeigt werden, dass sich einzelne BRCT-Domänen
auch ohne weitere intramolekulare BRCT-Interaktionspartner richtig falten
können. Ein Vergleich mit der Kristallstruktur der BRCT-Doppeldomäne zeigte,
dass sich zwei Helices (α1 and α3) leicht gegeneinander verschieben, wenn die
erste der beiden BRCT-Domänen (BRCT-n) fehlt. Diese strukturellen Differenzen
lassen vermuten, dass BRCT-n die transkriptionsaktivierende Funktion von
BRCT-c beeinflusst, und dass es eine durch direkte Interaktion an der
Kontaktstelle vermittelte allosterische Wechselwirkung zwischen den beiden
BRCT-Domänen gibt. Durch dieses "Finetuning" könnten schließlich Struktur und
Funktion präzise moduliert werden.
Im zweiten Teil (Kapitel 4) werden die Wechselwirkungen der
1,3-1,4-β-Glucanase H(A16-M) mit einem natürlichen Saccharid-Liganden
kristallographisch analysiert. 1,3-1,4-β-Glucanasen sind hochspezifische
Enzyme, die β-1,4 glycosidische Bindungen in 3-O-substituierten
Glucopyranosyl-Einheiten spalten. Die Kristallstruktur zeigt vier β-D
-Glucosyl-Einheiten (Glcβ4Glcβ4Glcβ3Glc) in der Substrat-Bindungsstelle und
entspricht dem nicht-kovalenten Enzym-Produkt-Komplex (E P-Komplex). Die hohe
Auflösung (1.64 Å) erlaubt die eindeutige Bestimmung von Konfiguration,
Konformation und Art der glycosidischen Bindung innerhalb der Zuckerkette. Ein
Vergleich mit dem Modell des Enzym-Substrat-Komplexes zeigt, dass der
Tetrasaccharid-Ligand eine starke, bislang nicht beschriebene hydrophobe
Interaktion mit Phe92 in der Bindungsstelle I eingeht. Die Strukturanalyse
des E P-Komplexes ermöglicht neue Einblicke in die strukturellen
Voraussetzungen für die spezifische Bindung und katalytische Spaltung von
natürlichen Saccharid-Substraten.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
enzyme-carbohydrate complex
dc.subject
protein structure determination
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::540 Chemie::540 Chemie und zugeordnete Wissenschaften
dc.title
Studies of Protein Structure and Function by X-ray Crystallography and NMR
Spectroscopy
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Udo Heinemann
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Hartmut Oschkinat
dc.date.accepted
2007-03-23
dc.date.embargoEnd
2007-05-31
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000002923-7
dc.title.translated
Studien zur Struktur und Funktion von Proteinen mit Hilfe von
Kristallstrukturanalyse und NMR Spektroskopie
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000002923
refubium.mycore.transfer
http://www.diss.fu-berlin.de/2007/379/
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000002923
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dcterms.accessRights.openaire
open access