dc.contributor.author
Kapourani, Era
dc.date.accessioned
2018-06-07T23:10:33Z
dc.date.available
2017-12-15T13:00:25.417Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/10146
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-14344
dc.description
1 Introduction 1 1.1 Cell encapsulation technologies 1 1.2 Cell encapsulation
therapeutic approaches 3 1.3 Polymeric materials for cell encapsulation 5 1.4
Geometry of the capsules 16 1.5 Encapsulation chemistries 17 1.6 Cell
encapsulation procedures 19 1.7 Anatomy and histology of pancreas 22 1.8
Pancreatic β-cells: insulin release and type 1 diabetes 24 1.9 Type 1
diabetes: available treatments 32 1.9.1 Insulin therapy 32 1.9.2 Pancreas
transplantation 33 1.9.3 Islet cell transplantation 34 2 Research goals 42 2.1
Dendritic Polyglycerol-Based Microgels for Cell Encapsulation Therapies 42
2.1.1 Objective 42 2.1.2 Results and discussion 44 2.1.3 Conclusions 64 2.2
Dendritic Polyglycerol-Based Microgels and Bulk Hydrogels for Transplantation
of Pancreatic Islet Cells 67 2.2.1 Objective 67 2.2.2 Results and discussion
69 2.2.3 Conclusions 82 2.3 Summary 85 3 Experimental 88 3.1 Materials and
methods 88 3.1.1 Reagents 88 3.1.2 Measurements 88 3.2 Synthesis 90 3.2.1
Synthesis of ethoxyethyl glycidyl ether EEGE 5 90 3.2.2 Synthesis of six-arm-
star-shaped polyglycidol S-PG 4 91 3.2.3 Synthesis of six-arm-star-shaped
polyglycidol-hexavinyl sulfonate S-PGVS 3 92 3.2.4 Synthesis of six-arm-star-
shaped polyglycidol hexaazide S-PG-hexaazide 2. 92 3.2.5 Synthesis of six-arm-
star-shaped polyglycidol hexaazide S-PG-hexaazide P1 93 3.2.6 Synthesis of
linear monobromo-poly(ethoxyethyl glycidyl ether) (monobromo-PEEGE 4) 94 3.2.7
Synthesis of linear α-bromo-ω-mesyloxy-poly(ethoxyethyl glycidyl ether)
(α-bromo-ω-mesyloxy-PEEGE 3) 94 3.2.8 Synthesis of linear α, ω-bisazido-
poly(ethoxyethyl glycidyl ether) (α, ω-bisazido-PEEGE 2) 95 3.2.9 Synthesis of
linear α,ω-bis-azido-PG (α,ω-bis-azido-lPG P2) 96 3.2.10 Synthesis of linear
α,ω-bis-azido-PEG P3 96 3.2.11 Synthesis of dPG-polymesylate 4 97 3.2.12
Synthesis of dPG-polyazide 3 97 3.2.13 Synthesis of dPG-polyamine 2 98 3.2.14
Synthesis of dPG-poly(bicyclooctyne) (dPG-polyC P4) 98 3.2.15 Synthesis of
surfactant KBT 99 3.2.16 Synthesis of dPGS-polyazide P5 100 3.2.17 Synthesis
of α, ω-bis(bicyclooctyne)-PEG P6 100 3.3 In Vitro studies 101 3.3.1
Cytotoxicity assay of NIH/3T3 cells by use of Cell Counting Kit-8 (CCK-8) 101
3.3.2 Treatment of mammalian NIH/3T3 cells prior to microfluidic encapsulation
101 3.3.3 Treatment of mouse insulinoma β-TC-6 cells prior to microfluidic
encapsulation 101 3.3.4 Treatment of mouse insulinoma β-TC-6 cells prior to
encapsulation in bulk hydrogels 102 3.4 Microfluidic templating 102 3.4.1
Microfluidic devices 102 3.4.2 Microfluidic encapsulation of mouse fibroblast
NIH/3T3 cells 102 3.4.3 Microfluidic encapsulation of mouse insulinoma β-TC-6
cells 104 3.5 Encapsulation of mouse insulinoma β-TC-6 cells in dPGS-based
bulk hydrogels 105 3.6 Cytocompatibility of dPG-based hydrogels with NIH/3T3
via live-dead staining 106 3.7 Cytocompatibility of dPGS-based hydrogels with
β-TC-6 cells via live-dead staining 106 3.8 Quantification of the released
insulin from β-TC-6 cell-laden dPGS bulk hydrogels via ELISA 107 4 Appendix
108 4.1 NMR spectra 108 4.2 GPC traces 120 4.3 IR spectra 121 4.4 Curriculum
Vitae 123 5 References 124
dc.description.abstract
Cell encapsulation is a very promising therapeutic strategy for the controlled
and sustained delivery of biologically relevant agents. This thesis has
contributed to the field with the bioorthogonal, microfluidic templating of
cell-laden polyglycerol-based matrices. The latter were constructed via
strain-promoted alkyne-azide cycloaddition of the newly synthesized azide-
functionalized star-shaped polyglycerol and dendritic polyglycerol (dPG) with
cyclooctyne moieties tethered on its surface. Linear polyglycerol as well as
polyethylene glycol (PEG) bearing both azides at their ends were also utilized
to fabricate overall three types of artificial 3D matrices that enclosed
fibroblast cells. By varying the implemented polymeric materials, specific
properties were introduced to each system that resulted in different viability
profiles of the encased cells. A type of microgel scaffolds was distinguished,
in which cells were cultured that retained full viability extending to three
weeks. As a result, these polyglycerol-particles could be used for long-term
immobilization of cells with the possibility to be studied and manipulated
during encapsulation. The established dPG-microgels were also used to immune-
isolate pancreatic β-cells for islet transplantation as a treatment of type 1
diabetes. Due to the poor cell viabilities detected already one day after
embedment the cellular vehicles were redesigned to bear a higher resemblance
to the physiological extracellular matrix of pancreatic islets. Therefore,
negatively charged sulfated dPG-polyazide (dPGS-polyazide) as well as
homobifunctional PEG with cyclooctynes at its ends (α,
ω-bis(bicyclooctyne)-PEG) were employed for the generation of both microgels
and bulk hydrogels as encapsulation systems. Whether at a range of micrometer
sizes or in bulk the dPGS-based hydrogel scaffolds presented highly
biocompatible environments to the enclosed pancreatic β-cells. These remained
vital exceeding one month of culture in the gels. The determined insulin
secretion prior to and post encapsulation in bulk gels augments the
exceptional documented cellular viabilities and holds great promise for their
application in in vivo studies of islet transplantation. On the whole, the
developed gels present significant potential not only for cell immobilization
but also for enveloping and de novo release of various therapeutic, biologic
payloads such as drugs, proteins, and even genetic material. Dendritic
polyglycerols constitute outstanding candidates for these applications due to
their globally favorable properties as well as their amenability to a series
of modifications that could optimize the gels’ performance and support even
longer graft lifetimes.
de
dc.description.abstract
Die Zellverkapselung ist eine vielversprechende therapeutische Strategie für
die kontrollierte und nachhaltige Freisetzung von biologisch aktiven
Substanzen. Die vorliegende Arbeit beschäftigt sich mit der bioorthogonalen
mikrofluidischen Herstellung zellbeladener Polyglycerinkapseln und deren
Evaluierung in biologisch relevanten Systemen. Der Tröpfchen basierte Aufbau
der Kapseln wird durch eine Alkin-Azid-Zykloadditionsreaktion, zwischen einem
erstmalig beschriebenen Azid funktionalisierten sternförmigen Polyglycerin und
einem mit Cyclooctin-Einheiten dekoriertem dendritischen Polyglycerin (dPG),
durchgeführt. Des Weiteren wurde mit Aziden funktionalisiert lineares
Polyglycerin sowie Polyethylenglykol (PEG) verwendet um insgesamt drei Arten
künstlicher 3D-Matritzen zu synthetisieren mit denen Fibroblasten verkapselt
wurden. Durch Variation der verwendeten Polymere wurden spezifische
Eigenschaften in jedes System eingeführt, die zu unterschiedlichen
Zellviabilitäten führten. Es wurden Mikrogele identifiziert in denen die
kultivierten Zellen eine volle Lebensfähigkeit von bis zu drei Wochen
aufwiesen. Die generierten Mikrogele eignen sich für die
Langzeitimmobilisierung von Zellen, wobei sich die Zellen während der
Verkapselung studieren und manipulieren lassen. Die etablierten dPG-Mikrogele
wurden daraufhin zur Immunisolierung von Pankreas-β-Zellen verwendet, dass
einen vielversprechenden Ansatz zur Therapie von Typ-1-Diabetes darstellt.
Wegen der schlechten Zellüberlebensraten, die bereits einen Tag nach der
Einbettung festgestellt wurden, wurden die Polymere neugestaltet, um eine
höhere Ähnlichkeit mit der physiologischen extrazellulären Matrix von
Pankreasinseln aufzuweisen. Daher wurde negativ geladenes sulfatiertes dPG-
Polyazid (dPGS-polyazid) sowie homobifunktionelles PEG mit Cyclooctinen an
seinen Enden (α, ω-bis(bicyclooctyn)-PEG) zur Erzeugung von beiden Mikro- und
Makrogelen als Verkapselungssysteme eingesetzt. Ob im Mikrometer- oder
Makrometerbereich, boten die dPGS-basierten Hydrogelgerüste den
eingeschlossenen pankreatischen β-Zellen hoch biokompatible Umgebungen an. Die
Zellen blieben vital über einen Monat in Kultur. Die ermittelte
Insulinsekretion der Zellen vor und nach der Verkapselung in dPGS Makrogelen
ergänzt die außergewöhnlich dokumentierten zellulären Viabilitäten und ist
vielversprechend für ihre Anwendung für in vivo Studien der
Inseltransplantation. Insgesamt können sich die entwickelten Gele nicht nur
für die Zellimmobilisierung eignen, sondern auch für die Umhüllung und die de
novo Freisetzung von verschiedenen therapeutischen, biologischen Ladungen wie
Medikamenten, Proteinen und sogar genetischem Material. Dendritische
Polyglycerine stellen aufgrund ihrer inhärenten günstigen Eigenschaften
hervorragende Kandidaten für diese Anwendungen dar. Darüber hinaus weisen sie
sich durch eine exzellente Modifizierbarkeit aus, die die Leistung der Gele
optimieren und sogar noch längere Transplantatlebensdauer unterstützen
könnten.
de
dc.format.extent
xii, 133 Seiten
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
dendritic polyglycerol
dc.subject
cell encapsulation
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::540 Chemie::547 Organische Chemie
dc.title
Dendritic Polyglycerol-Based Microgels and Bulk Hydrogels for Cell
Encapsulation Therapies
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Rainer Haag
dc.contributor.furtherReferee
PD Dr. Kai Licha
dc.date.accepted
2017-10-25
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000106092-1
dc.title.translated
Dendritische Polyglycerol-Basierte Mikrogele und Hydrogele für
Zellverkapslungstherapien
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000106092
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000022913
dcterms.accessRights.dnb
free
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open access