dc.contributor.author
Weber, Harald
dc.date.accessioned
2018-06-07T23:06:59Z
dc.date.available
2007-05-08T00:00:00.649Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/10073
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-14271
dc.description
Titelblatt und Inhaltsverzeichnis
Zusammenfassung
Summary
Einleitung
Material und Methoden
Ergebnisse
Diskussion
Anhang
Literaturverzeichnis
dc.description.abstract
σs ist ein Sigmafaktor der RNA Polymerase und aktiviert die Expression von
Genen der generellen Streßantwort in Escherichia coli. Über viele Jahre hinweg
wurden Gene des σs-Netzwerkes identifiziert, aber der volle Umfang σs-
abhängiger Gene sowie die Details ihrer Regulation blieben weitgehend unklar.
Ziel der vorliegenden Arbeit war die Identifizierung aller σs-abhängigen Gene
in E. coli mittels globaler Transkriptionsanalyse und die Bestimmung von
regulatorischen Untergruppen im σs-Netzwerk. Ausgehend von den Ergebnissen der
globalen Transkriptionsanalyse sollten σs-abhängige Gene mit regulatorischer
Funktion identifiziert und die durch diese Faktoren kontrollierten Gene sowie
die Details ihrer Regulation bestimmt werden.
In der vorliegenden Arbeit wurden mittels globaler Transkriptionsanalyse
(Microarrayanalyse) die Gene des σs-Netzwerkes in E. coli identifiziert. Der
Wildtypstamm MC4100 wurde mit der isogenen rpoS Mutante unter drei
verschiedenen σs-Aktivität induzierenden Wachstumsbedingungen (Übergang in
die stationäre Phase, osmotischer Streß, Säurestreß) verglichen. Insgesamt
zeigten 481 Gene σs-Abhängigkeit unter mindestens einer Wachstumsbedingung.
Davon waren 140 Gene σs-abhängig unter allen drei getesteten Bedingungen,
weshalb sie auch als 'Kerngene' der generellen Streßantwort bezeichnet wurden.
In den Promotorregionen der Kerngene konnte das bereits zuvor beschriebene
DNA-Konsensusmotiv der -10 Erkennungsregion von σs gefunden und anhand dieser
Daten die Sequenz des Motivs genauer definiert werden.
Mit den Kerngenen ydaM und yciR wurden erstmalig GGDEF/EAL-Proteine und damit
das bakterielle Signalmolekül cyclisches di-Guanosinmonophosphat (c-di-GMP)
als Komponenten im σs-Netzwerk identifiziert. YdaM und YciR regulieren in
antagonistischer Weise die Expression von aggregativen Fimbrien (Curli). Dabei
wirkt YdaM positiv und YciR negativ auf die Transkription von csgD, dem
zentralen Aktivator der Curliexpression. Untersuchungen in vitro bestätigten,
daß YdaM eine Diguanylatcyclase (synthetisiert c-di-GMP) bzw. YciR eine
Phosphodiesterase (degradiert c-di-GMP) ist. Microarrayanalysen definierten
YdaM und YciR als spezifische Regulatoren der Curliexpression und nicht als
Globalregulatoren. Für MlrA, einem weiteren σs-abhängigen Aktivator der
Curliexpression, wurde die Bindestelle in der stromaufwärts gelegenen DNA-
Region von csgD auf einen Bereich von ungefähr 40 Basenpaaren eingegrenzt.
Insgesamt bilden die Regulatoren YdaM, YciR, MlrA und CsgD sowie die
Curlistrukturgene ein regulatorisches Modul im σs-Netzwerk.
Als ein weiteres regulatorisches Modul im σs-Netzwerk wurden Gene der
Säurestreßantwort (gadA, gadBC, hdeAB, hdeD, slp, ybaS, ybaT, yhiM) und
andere, sowie deren Regulatoren GadX, und GadE identifiziert. Es konnte
gezeigt werden, daß gadE (der zentrale Regulator der Glutamat-abhängigen
Säurestreßantwort in E. coli) ein σs\- und GadX-abhängiges Gen ist. Außerdem
wurden weitere σs-, GadX- und GadE-abhängige Gene, die bisher nicht im
Zusammenhang mit der Säurestreßantwort standen, bestimmt und dem
Säurestreßmodul im σs-Netzwerk zugeordnet. Die Gene des Säurestreßmoduls
konnten aufgrund unterschiedlicher GadX- und GadE-Abhängigkeit in
regulatorische Untergruppen eingeordnet werden. Dabei wurde eine Gruppe von
Genen definiert, die nur GadX- aber nicht GadE-abhängig exprimiert wird und
zwei weitere Gruppen, die in unterschiedlicher Weise durch GadX und GadE
reguliert werden. Das Säurestreßmodul zeigt damit eine komplexe
Binnenregulation, die erstmalig in dieser Form gezeigt wurde.
de
dc.description.abstract
σs is a sigma factor of RNA Polymerase activating the expression of the
general stress response genes in Escherichia coli. Genes belonging to the σs
network were identified over many years, but the total number of σs dependent
genes and the details of their regulation remained still widely unknown. The
goal of this work was the identification of all σs dependent genes by global
transcription analysis and the determination of regulatory subgroups within
the σs network. On the bases of the results of the global transcription
analysis, σs dependent genes with a regulatory function should be identified
and the genes controlled by these factors and the details of their regulation
further examined.
In this work the genes belonging to the σs-network in E. coli were identified
by global transcription analysis (microarray analysis). The wild type strain
MC4100 was compared with its isogenic rpoS Mutant under three different growth
conditions (transition into stationary phase, osmotic upshift, acid stress)
triggering σs activity. Altogether 481 genes showed σs dependence under at
least one of these conditions. Among these, 140 genes displayed σs-dependence
under all three conditions tested and therefore were designated as the 'core
genes' of the general stress response. Within the promoter regions of the core
genes, the previously described DNA consensus motif of the -10 recognition
site of σs was identified. On the basis of this data the consensus motif was
defined with higher accuracy.
Finding the core genes ydaM and yciR, for the first time GGDEF/EAL proteins
and the bacterial secondary messenger cyclic di-guanosine monophosphate (c-di-
GMP) were identified as components of the σs network. YdaM and YciR
antagonistically control the expression of curli fimbriae where YdaM acts
positivly and YciR negativly on the transcription of csgD, the central
regulator of curli expression. In vitro analysis confirmed YdaM as a
Diguanylatecyclase (synthesizes c-di-GMP) and YciR as a Phosphodiesterase
(degrades c-di-GMP). Microarray analysis defined YdaM and YciR as specific
regulators of curli expression instead of global regulators. For MlrA, another
σs-dependent activator of curli expression, a binding site within the DNA
upstream region of csgD was narrowed down to a range of approximately 40
basepairs. Overall the regulators YdaM, YciR, MlrA and CsgD together with the
curli structural genes form a regulatory module within the σs network.
The genes of the acid stress response (gadA, gadBC, hdeAB, hdeD, slp, ybaS,
ybaT, yhiM) and others, together with their regulators GadX and GadE were
identified as another regulatory module within the σs network. It was shown
that gadE (the central regulator of the glutamic acid dependent acid
resistance in E. coli) is a σs and GadX dependent gene. Additional σs , GadX
and GadE dependent genes, not considered as part of the acid stress response
until now, were assigned to the acid stress module within the σs network. The
genes of the acid stress module were categorized as distinct regulatory
subgroups, according to differential dependence on GadX and GadE. One
regulatory group consists of genes controlled by GadX solely, two other groups
of genes are controlled by GadX and GadE in differing extent.
en
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
globale Transkriptionsanalyse
dc.subject
Curli Fimbrien
dc.subject
Säureresistenz
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.title
Regulatorische Module innerhalb des σs-Netzwerkes in Escherichia coli
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Regine Hengge
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Rupert Mutzel
dc.date.accepted
2007-05-03
dc.date.embargoEnd
2007-05-11
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000002877-8
dc.title.translated
Regulatory modules within the σs network in Escherichia coli
en
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000002877
refubium.mycore.transfer
http://www.diss.fu-berlin.de/2007/315/
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000002877
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open access