dc.contributor.author
Schulte, Kathrin Wiebke
dc.date.accessioned
2018-06-07T16:35:32Z
dc.date.available
2016-09-06T09:23:43.251Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/2753
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-6954
dc.description
Contents i List of figures v List of tables vii 1 Introduction 1 1.1 bHLH-PAS
domain comprising transcription factor family 1 1.2 The Aryl hydrocarbon
receptor 2 1.3 Domain organization of AhR 2 1.4 AhR ligands 4 1.5 AhR signal
transduction 5 1.5.1 The canonical pathway 5 1.5.2 The adaptive response 8
1.5.3 The toxic response 8 1.6 The role of AhR in development 8 1.7 Role of
AhR in cell proliferation 9 1.8 Role of AhR in the immune system 10 1.9 Role
of AhR in cancer 11 1.10 Structural insights into the bHLH-PAS domain
containing transcription factor family 13 2 Scope of this work 18 3 Materials
and Methods 19 3.1 Materials 19 3.1.1 Enzymes 19 3.1.2 Kits 19 3.1.3 Cell
lines 20 3.1.4 Vectors 20 3.1.5 Clones 20 3.1.6 Primers 20 3.1.7 Media 21
3.1.8 Antibiotics 21 3.1.9 Buffers 21 3.2 Molecular biology methods 22 3.2.1
Polymerase chain reaction 22 3.2.2 DNA digestion 22 3.2.3 Agarose gel
electrophoresis 22 3.2.4 DNA purification 22 3.2.5 Ligation 23 3.2.6 Ligase-
independent-cloning (LIC) 23 3.2.7 Site directed mutagenesis 23 3.2.8
Preparation of chemically competent E.coli 23 3.2.9 Transformation of
chemically competent E.coli 24 3.2.10 Isolation of plasmid DNA 24 3.3
Biochemical methods 24 3.3.1 SDS PAGE 24 3.3.2 Protein solubility test 24
3.3.3 Large scale protein overexpression 25 3.3.4 Protein purification 25
3.3.5 Protein concentration 25 3.3.6 Determination of protein concentration 25
3.3.7 Protein storage 26 3.3.8 Isothermal titration calorimetry (ITC) 26 3.3.9
Analytical gel filtration and right angle light scattering (RALS) 26 3.3.10
Circular dichroism spectroscopy 26 3.4 Crystallographic and computational
methods 27 3.4.1 Protein crystallization 27 3.4.2 Cryo-protection of crystals
27 3.4.3 Data collection 28 3.4.4 Protein structure solution 28 4 Results 31
4.1 Approaches to purifying the Aryl hydrocarbon receptor 31 4.2 Protein
purification of the AhR/ARNT protein complex 32 4.3 CD (circular dichroism)
measurements 35 4.4 ITC measurements 36 4.5 RALS measurements 39 4.6
Structural analysis of the AhR/ARNT complex 41 4.6.1 Crystallization 41 4.6.2
Sample preparation and crystallization of the AhR/ARNT complex bound to dsDNA
41 4.6.3 Molecular replacement 45 4.6.4 Experimental phasing 47 4.6.4.1
Selenomethionine substituted Ahr/ARNT complex 47 4.6.4.2 Heavy atom labelling
of the crystals of the AhR/ARNT complex bound to 12mer dsDNA 49 4.6.4.3
Computational approaches to solve the phase problem 51 4.6.5 Optimization of
the AhR construct 53 4.6.6 Optimization of the dsDNA constructs 54 5
Discussion and Outlook 57 6 Introduction 63 6.1 Guanine nucleotide binding and
hydrolyzing proteins 63 6.1.1 The G domain switch 63 6.1.2 GAPs and GEFs 66
6.1.3 GADs 67 6.2 The dynamin superfamily of G proteins 69 6.2.1 Dynamins 70
6.2.2 Bacterial dynamin-like proteins (BDLPs) 74 6.2.3 Atlastins 76 6.3
GTPases in immunity 78 6.3.1 Resistance and immunity 78 6.3.2 Interferons 79
6.3.3 Cell-autonomous immunity 80 6.3.4 Toxoplasma gondii 80 6.3.5 p47 GTPases
81 7 Scope of this work 90 8 Materials and Methods 91 8.1 Materials 91 8.2
Protein expression and purification 91 8.3 Protein crystallization 91 8.4
Cryo-protection of crystals 91 8.5 Data collection 92 8.6 Protein structure
solution 92 8.7 Atomic model building and refinement 92 8.8 Structure analysis
and figure preparation 92 8.9 Protein structure validation and deposition 92 9
Results 93 9.1 Structural analysis of Irga6 93 9.1.1 Crystallization and
structure determination 93 9.1.2 The overall structure of Igra6, R31E, K32E,
K176E, K246E 97 9.1.3 Intramolecular interactions within the crystal lattice
99 9.1.4 The backside dimer of Igra6 R31E, K32E, K176E, K246E 101 9.1.5 The G
domain dimer 103 10 Discussion 106 10.1 Mechanistic insights into Irga6
oligomerization 106 10.1.1 Catalysis 107 10.1.2 The G domain interface 108
10.1.3 Other residues 109 10.1.4 The backside dimer 111 10.2 Comparism of
Irga6 with Atlastin 112 10.3 Oligomerization of Irga6 on the PVM based on the
oligomerization mode of dynamin and BDLP 115 10.4 Model of Irga6
oligomerization at the PVM 117 10.5 Phylogenetic aspects of the G domain
dimerization 118 10.6 Outlook 120 Bibliography 122 Abstract 136
Zusammenfassung 138 Appendix A Instrument list 140 Appendix B Chemical list
141 Appendix C Alignments 144 Appendix D Clone list 147 Appendix E
Abbreviations 151 Appendix F Amino acids 153 Erklärung 154 Acknowledgement 155
dc.description.abstract
In my PhD thesis, I addressed two different topics. The first part dealt with
the structural and biochemical characterization on the aryl hydrocarbon
receptor (AhR). This protein belongs to the bHLH-PAS family of transcription
factors that sense environmental signals. As all members of this family, AhR
comprise a bHLH domain, necessary for DNA binding, a PAS A domain, necessary
for dimerization, a PAS B domain, which in case of AhR is able to bind ligands
and an unstructured TAD domain, involved in transactivation. Upon ligand
binding, AhR heterodimerizes with the aryl hydrocarbon receptor nuclear
translocator (ARNT), which also belongs to the bHLH-PAS family of
transcription factors. Through this dimerization, the fully active
heterodimeric transcription factor is formed. Depending on the ligand,
transcriptional activation orchestrates the expression of genes required for
detoxification, pro-tumor and anti-tumor pathway or immune response. In this
study, AhR was functionally and structurally characterized to better
understand the process of heterodimerization and DNA binding on a molecular
level. This study showed for the first time successful co-expression and co-
purification of the AhR/ARNT heterodimeric transcription factor complex
comprising the bHLH and PAS A domains. The AhR/ARNT complex appeared properly
folded and heterodimerized in a 1:1 stoichiometry. The affinity of the
AhR/ARNT complex towards dsDNA containing the DRE was in the lower nano-molar
range. This interaction was formed by one molecule AhR/ARNT complex and one
molecule double stranded (ds)DNA. The AhR/ARNT complex bound to 12mer dsDNA
was crystallized and crystals were extensively optimized. The optimized
crystals diffracted anisotropically up to 3.5 Å and various phasing attempts
were carried out in order to solve the structure of the AhR/ARNT complex bound
to dsDNA. Although structure determination was not achieved within this study,
the success of high yield purification of AhR/ARNT complex and biochemical
characterization in vitro is a mile stone for further structural
investigations. The second part of this study dealt with the structural
characterization of the immunity-related GTPase Irga6. Immunity-related
GTPases (IRGs) constitute a powerful cell-autonomous resistance systems
against several intracellular pathogens in mice. In mice, 23 paralogs of IRG
proteins are identified and Irga6 is one of the best studied members of the
family. Irga6 is composed of a G domain flanked by a C-terminal and an
N-terminal helical domain. Biochemical studies analyzed an interface, which
spans over the nucleotide binding pocket of the G domains and is crucial for
nucleotide-dependent oligomerization and cooperative GTP-hydrolysis. However,
the already known crystal structures of Irga6 show a dimerization mode via the
backside dimer but do not reveal this G domain interface. In this part of the
study, the structure of a non-oligomerizing Irga6 mutant bound to GMPPNP was
solved. This new structure reveals the G domain interface and thus a new mode
of G domain dimerization for the IRG family. Beside the nucleotide, two
additional interfaces participate in G domain dimerization. A hydrogen bonding
network between the switch II and the trans stabilizing loop as well as
hydrophobic interactions between the switch I loop and the trans activation
loop and the G4 loop establish the G domain dimer interface. These findings
are in excellent agreement with the previously published biochemical data.
Based on the solved G dimer structure in combination with the published
biochemical data and the structural information available for BDLP I proposed
an oligomerization model of Irga6 with the G dimer as a nucleotide-dependent
interaction interface.
de
dc.description.abstract
Innerhalb dieser Arbeit wurden zwei Themen behandelt. Zunächst befasst sich
die Arbeit mit der strukturellen und biochemischen Charakterisierung des Aryl-
hydrocarbon-rezeptors (AhR). Dieser gehört zu der bHLH-PAS-Domänen Familie der
Transkriptionsfaktoren und reagiert auf unterschiedlichste Umwelteinflüsse.
AhR besteht, wie alle Mitglieder dieser Proteinfamilie, aus einer bHLH Domäne,
welche die DNA Bindung ermöglicht, aus einer PAS A Domäne, notwendig für die
Heterodimerisierung, einer PAS B Domäne, welche im Falle von AhR Liganden
binden kann, sowie einer unstrukturierten TAD Domäne. Durch Ligandenbindung
wird AhR aktiviert und heterodimerisiert mit dem Aryl-hydrocarbon-rezeptor-
nuclear-translocator (ARNT), ebenso Mitglied der oben genannten
Proteinfamilie, zu einem aktiven, heterodimeren Transkriptionsfaktor. Dieser
Komplex kann bestimmte DNA Motive binden und dadurch die Transkription
aktivieren. Abhängig von der Art des Liganden wird die Transkription von
unterschiedlichen Genen aktiviert, welche wiederum die Detoxification, das
Tumorwachstum oder aber die Immunantwort beeinflussen können. Um die
Heterodimerisierung und DNA-Bindung auf molekularer Ebene zu verstehen, wurde
in dieser Studie AhR funktionell und strukturell charakterisiert. Erstmalig
konnte hier die Coaufreinigung und Coexpression der bHLH und PAS A Domänen des
AhR/ARNT Komplexes gezeigt werden. Die weitere Charakterisierung ergab, dass
der AhR/ARNT Komplex korrekt gefaltet ist und aus jeweils einem Molekül AhR
und ARNT geformt wird. Die Affinität des AhR/ARNT Komplexes zu
doppelsträngiger DNA, welche ein DRE Motiv beinhaltet, liegt im niedrigen
nanomolaren Bereich. Jeweils ein Molekül AhR/ARNT Komplex und ein Molekül
doppelsträngige DNA sind an der Interaktion beteiligt. Der AhR/ARNT Komplex,
gebunden an ein Molekül doppelsträngiger DNA, wurde kristallisiert und die
Kristalle wurden umfangreich optimiert. Durch die Optimierung konnte eine
Diffraktion der Kristalle bis zu einer Auflösung von 3.5 Å erreicht werden.
Zahlreiche Phasierungsmethoden wurden angewendet, um die Kristallstruktur des
AhR/ARNT Komplexes, gebunden an doppelsträngige DNA, zu lösen. Obwohl die
Strukturbestimmung in dieser Studie nicht gelang, ist der Erfolg der
Aufreinigung von AhR im Komplex mit seinem Interaktionspartner ARNT und dessen
biochemischen Charakterisierung in vitro als hervorragende Basis für
weiterführende strukturelle Studien zu sehen. Der zweite Teil dieser Arbeit
behandelt die strukturelle Charakterisierung der immunity-related GTPase (IRG)
Irga6. Diese stellen in Mäusen ein wirkungsvolles, zellautonomes
Resistenzsystem gegen diverse interzelluläre Pathogene dar. In Mäusen sind
insgesamt 23 Paraloge der IRG Proteine identifiziert, wobei Irga6 das wohl am
besten studierte Mitglied der Proteinfamilie ist. Irga6 besteht aus einer N-
und C-terminalen, helikalen Domäne sowie aus einer G Domäne, welche Nukleotid-
abhängige Oligomerisation und kooperative GTP Hydrolyse bewirkt. Biochemische
Studien zeigten, dass die für Oligomerisation und kooperative GTP Hydrolyse
nötige Interaktionsfläche den Bereich der Nukleotidbindetasche der G Domäne
von Irga6 mit einschließt. Die bisher bekannten Kristallstrukturen von Irga6
konnten jedoch diese G Domänen Dimerisierung nicht darstellen. In diesem Teil
der Studie wurde eine oligomerisations-defizite Irga6 Mutante, gebunden an
GMPPNP, strukturell charakterisiert, um die G Domänen Interaktion zu verstehen
und die Oligomerisation von Irga6 zu erklären. In der Tat konnte die
Kristallstruktur der Irga6 Mutante, gebunden an GMPPNP, gelöst und ein neuer
Mechanismus der G Domänen Dimerisierung beschrieben werden, welcher das
Nukleotid involviert. Neben dem Nukleotid konnten zwei weitere
Interaktionselemente identifiziert werden, die die G Domänen Dimerisierung
stabilisieren. Ein Wasserstoffbrückennetzwerk zwischen der switch-II-Schleife
und der trans-Stabilisierungs-Schleife sowie hydrophobe Wechselwirkungen
zwischen der Switch-I-Schleife und der G4-Schleife bzw. der trans-
Stabilisierungs-Schleife tragen hier zur Stabilisierung bei. Insgesamt
bestätigt die hier präsentierte Kristallstruktur die bekannten biochemischen
Daten. Basierend auf der hier ermittelten Kristallstruktur von Irga6, den
strukturellen Informationen zu BDLP und den bekannten biochemischen Daten
schlage ich ein Oligomerisationsmodell für Irga6 vor, welches die neu
entdeckte nukleotidabhängige G Domänen Dimerisierung zur Grundlage hat.
de
dc.format.extent
vii, 155 Seiten
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
G-domain interface
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::572 Biochemie
dc.title
Structural and biochemical studies on the aryl hydrocarbon receptor and on the
immunity-related GTPase Irga6
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Oliver Daumke
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Udo Heinemann
dc.date.accepted
2015-10-06
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-fudissthesis000000102870-9
dc.title.translated
Strukturelle und biochemische Studien am Aryl-hydrocarbon-rezeptor und an der
immunity-related GTPase Irga6
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000102870
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000019899
dcterms.accessRights.dnb
free
dcterms.accessRights.openaire
open access