dc.contributor.author
Becher, Anja
dc.date.accessioned
2018-06-08T00:46:23Z
dc.date.available
1999-11-17T00:00:00.649Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/12419
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-16617
dc.description
Titlepage, Contents
1\. Introduction
1.1 Synaptic transmission and plasticity
1.2 Proteins involved in exocytotic membrane fusion
> 1.2.1 Synaptobrevin
>
> 1.2.2 Syntaxin
>
> 1.2.3 SNAP 25
1.3 Characterisation of the assembled fusion complex
1.4 Role of synaptotagmin in regulated exocytosis
1.5 Regulation of SNARE complex formation
1.6 Synaptophysin: an abundant vesicle protein whose function has remained
controversial
> 1.6.1 Localisation and structure of synaptophysin
>
> 1.6.2 Proposed functions of synaptophysin
1.7 Perspective
2\. Materials
2.1 Antibodies
> 2.1.1 Primary antibodies (monoclonal)
>
> 2.1.2 Primary antisera (polyclonal)
>
> 2.1.3 Secondary antibodies
>
> 2.1.4 Recombinant antibodies
2.2 Chemicals and reagents
2.3 Buffers and solutions
2.4 Equipment
> 2.4.1 Centrifuges
>
> 2.4.2 Centrifugal filter units
>
> 2.4.3 Electrophoresis equipment
>
> 2.4.4 Spectrophotometers
3\. Methods
3.1 Preparation of synaptosomes and synaptic vesicles from rat brain
> 3.1.1 Preparation of synaptosomes
>
> 3.1.2 Preparation of crude synaptic vesicles
3.2 Determination of protein concentrations
> 3.2.1 Bicinchoninic acid method to determine protein concentration
>
> 3.2.2 Bradford method to determine protein concentration
3.3 Immunoprecipitation of protein complexes
3.4 Protein gel electrophoresis
3.5 Western blotting and immunodetection
3.6 Chemical Cross-linking using DSS
3.7 Preparation of cell line and primary tissue culture samples
3.8 Immunoisolation of synaptic vesicles
3.9 Recombinant synaptobrevins
4\. Results
4.1 Establishment of experimental procedures
4.2 The synaptophysin-synaptobrevin complex and the SNARE complex in embryonic
brain and neuroendocrine cells
> 4.2.1 The synaptophysin-synaptobrevin complex and the SNARE complex in
embryonic rat brain
>
> 4.2.2 The synaptophysin-synaptobrevin complex and the SNARE complex in
embryonic mouse brain
>
> 4.2.3. The synaptophysin-synaptobrevin complex and the SNARE complex in
neuroendocrine cells
4.3 Localisation of synaptophysin and synaptobrevin in embryonic and adult
brain
4.4 Posttranslational modifications
> 4.4.1 Palmitoylation
>
> 4.4.2 Reduced and oxidised forms of synaptophysin
>
> 4.4.3 Recombinant synaptobrevin
4.5 A factor that induces binding
4.6 Physiological / pathophysiological relevance
5\. Discussion
5.1 The SNARE proteins and synaptophysin
5.2 Developmental upregulation of the synaptophysin-synaptobrevin complex
> 5.2.1 Control experiments verify the developmental upregulation of the
synaptophysin-synaptobrevin complex
>
> 5.2.2 Cross-linking of the synaptophysin-synaptobrevin complex in adult but
not in embryonic brain
>
> 5.2.3 Regional differences in synaptophysin-synaptobrevin complex formation
with respect to development?
5.3 Possible factors regulating the developmental upregulation of the
synaptophysin-synaptobrevin complex
> 5.3.1 Synaptophysin and synaptobrevin occur on the same vesicle population
during development
>
> 5.3.2 Observed differences in lipid modification of synaptobrevin cannot
explain the developmental upregulation of the synaptophysin-synaptobrevin
complex
>
> 5.3.3 Synaptophysin from embryonic brain, from PC 12 cells and from
transfected CHO cells does not bind to recombinant synaptobrevin
>
> 5.3.4 Disulphide bridges in synaptophysin from adult and embryonic brain
>
> 5.3.5 Possible binding partners for the synaptophysin-synaptobrevin complex
>
> 5.3.6 A small peptide from adult cytosol induces formation of the
synaptophysin-synaptobrevin complex
5.4 Possible functions of synaptophysin and the synaptophysin-synaptobrevin
interaction
> 5.4.1 Synaptophysin probably plays a role in the genesis and stabilisation
of synaptic vesicles
>
> 5.4.2 Synaptophysin may provide a readily available pool of synaptobrevin
for exocytosis
7\. References
dc.description.abstract
The integral synaptic vesicle protein synaptobrevin occurs in two mutually
exclusive complexes in the adult brain. One of these complexes is formed
between synaptobrevin and the synaptic vesicle protein synaptophysin. The
majority of synaptobrevin is found in this complex. The second complex is
formed between synaptobrevin and the plasma membrane proteins SNAP 25 and
syntaxin. This so-called SNARE complex is a prerequisite for exocytotic
membrane fusion. Synaptobrevin that is bound to synaptophysin is not available
for SNARE complex formation. The aim of the current study was to determine
whether these two complexes are differentially regulated during neuronal
development. A combination of immunoprecipitation and chemical cross-linking
experiments shows that the synaptophysin-synaptobrevin complex is upregulated
during neuronal development. In embryonic brain, the synaptophysin-
synaptobrevin complex is not detectable, although synaptophysin and
synaptobrevin are both clearly expressed. In contrast, the ability of
synaptobrevin to participate in the SNARE complex exists as early as embryonic
day 14. The developmental upregulation of the synaptophysin-synaptobrevin
complex can also be observed in hippocampal primary tissue culture, where the
two proteins do not interact at day 6 in culture but clearly form a complex by
day 13 in culture. In neuroendocrine cells and tissues, the synaptophysin-
synaptobrevin complex is always absent, although the SNARE complex is present.
Immunoisolation of intact vesicles shows that synaptophysin and synaptobrevin
are localised to the same vesicle pool in embryonic brain. Therefore, a
differential sorting process cannot account for their lack of interaction.
Synaptobrevin is palmitoylated in adult but not in embryonic brain. However,
experiments using recombinant synaptobrevin, which is not palmitoylated,
indicate that palmitoylation of synaptobrevin appears not to be a prerequisite
for its binding to synaptophysin. Rather, a posttranslational modification of
synaptophysin is responsible for the developmental changes in the
synaptophysin-synaptobrevin interaction. The nature of this posttranslational
modification of synaptophysin still remains to be elucidated. It does,
however, not seem to involve rearrangement of disulphide bonds in
synaptophysin. The posttranslational modification of synaptophysin is caused
by a factor residing in the synaptic cytosol. When embryonic vesicles are
incubated with synaptic cytosol isolated from adult brain, formation of the
synaptophysin-synatobrevin complex is induced. Cytosol from embryonic brain,
however, cannot induce complex formation on embryonic vesicles. Neither does
it inhibit complex formation on adult vesicles. These results indicate that
synaptic cytosol from adult but not embryonic brain contains a factor that is
required for the posttranslational modification of synaptophysin. This active
factor appears to be a short peptide of less than 3 kDa in size. It is
probable that synaptophysin fine-tunes synaptic responses by regulating the
availability of synaptobrevin to the SNARE complex in a positive manner.
According to this view, synaptophysin binds to synaptobrevin subsequent to
endocytosis and SNARE disassembly, thereby preventing the re-association of
synaptobrevin with vesicle-associated syntaxin and SNAP 25. In this way,
synaptophysin may provide a reserve pool of synaptobrevin that can be
recruited during periods of high synaptic activity. Experiments performed for
this study using kindled rats seem to support such a role for synaptophysin.
Kindled rats, which serve as a model for epilepsy, show an increase in
synaptophysin-synaptobrevin complex formation compared to unstimulated
controls. Although these results are preliminary, they tentatively suggest
that increased synaptic activity is associated with increased complex
formation.
In conclusion, the current study shows that the synaptophysin-synaptobrevin
interaction represents a component of synaptic plasticity that acts at the
level of the synaptic vesicle during development as well as in the adult
brain.
de
dc.description.abstract
Das synaptische Vesikelprotein Synaptobrevin geht im adulten Gehirn zwei
verschiedene, einander ausschließende Interaktionen ein. Zum einen bildet
Synaptobrevin mit dem Vesikelprotein Synaptophysin einen Komplex, in dem sich
der Großteil des Synaptobrevins befindet. Zum anderen geht Synaptobrevin
zusammen mit den Plasmamembranproteinen SNAP 25 und Syntaxin den SNARE Komplex
ein, der eine Voraussetzung für die exozytotische Membranfusion ist.
Synaptobrevin im Komplex mit Synaptophysin steht nicht für den SNARE Komplex
zur Verfügung. In der vorliegenden Arbeit sollte ermittelt werden, ob diese
beiden Komplexe während der Entwicklung unterschiedlich reguliert werden. Mit
Hilfe der Immunpräzipitation und der chemischen Quervernetzung wurde gezeigt,
daß der Synaptophysin-Synaptobrevin-Komplex während der neuronalen Entwicklung
hochreguliert wird. Im embryonalen Gehirn kommt kein Synaptophysin-
Synaptobrevin-Komplex vor, obwohl beide Proteine vorhanden sind. Dagegen ist
der SNARE-Komplex schon am Embryonaltag 14 nachweisbar. Das
entwicklungsabhängige Auftauchen des Synaptophysin-Synaptobrevin-Komplexes
läßt sich auch in neuronalen Primärkulturen des Hippocampus verfolgen. Während
am sechsten Tag in Kultur der Komplex noch nicht vorhanden ist, kann er am Tag
13 deutlich nachgewiesen werden. In neuroendokrinen Zellen und Geweben kommt
der Synaptophysin-Synaptobrevin-Komplex nicht vor. An immunisolierten,
intakten synaptischen Vesikeln konnte gezeigt werden, daß Synaptophysin und
Synaptobrevin im embryonalen Gehirn auf derselben Vesikelpopulation
lokalisiert sind. Eine Sortierung der beiden Proteine auf unterschiedliche
Vesikelpopulationen kann daher die fehlende Interaktion nicht erklären.
Synaptobrevin wird im adulten, aber nicht im embryonalen, Gehirn
palmitoyliert. Experimente mit rekombinantem, nicht palmitoyliertem
Synaptobrevin deuten jedoch darauf hin, daß für die Komplexbildung mit
Synaptophysin keine Palmitoylierung des Synaptobrevins notwendig ist. Für die
entwicklungsabhängigen Veränderungen der Synaptophysin-Synaptobrevin
Interaktion ist wahrscheinlich eine posttranslationale Modifikation des
Synaptophysins und nicht des Synaptobrevins verantwortlich. Die Beschaffenheit
dieser posttranslationalen Modifikation von Synaptophysin muß noch analysiert
werden. Eine Veränderung der Disulfidbrücken im Synaptophysinmolekül scheint
nicht verantwortlich zu sein. Die posttranslationale Modifikation des
Synaptophysins läßt sich durch einen zytosolischen Faktor hervorrufen. Die
Inkubation von embryonalen Vesikeln mit adultem synaptischen Zytosol induziert
die Interaktion von Synaptophysin mit Synaptobrevin. Zytosol von embryonalem
Gehirn induziert dagegen keine Komplexbildung bei embryonalen Vesikeln aber
hemmt auch nicht die Komplexbildung bei adulten Vesikeln. Diese Ergebnisse
zeigen, daß nur adultes Zytosol einen Faktor enthält, der eine
posttranslationale Modifikation des Synaptophysin bewirkt. Weiterführende
Versuche haben ergeben, daß es sich bei diesem Faktor um ein kurzes Peptid von
weniger als 3 kDa handelt. Es ist wahrscheinlich, daß Synaptophysin eine
Feinabstimmung der synaptischen Antwort ermöglicht, indem es die Verfügbarkeit
des Synaptobrevins für den SNARE Komplex positiv reguliert. Nach der
Endozytose kommt es zu einer Dissoziation der vesikulären SNARE Komplexe.
Bindung des Synaptophysins an Synaptobrevin könnte die unerwünschte
Komplexbildung von Synaptobrevin mit Vesikel-assoziierten Syntaxin und SNAP 25
verhindern. Das an Synaptophysin gebundene Synaptobrevin könnte so eine
Reserve darstellen, die bei hoher synaptischer Aktivität rekrutiert werden
kann. Erste Experimente an gekindelten Ratten unterstützen eine solche
Hypothese. Gekindelte Ratten, die als ein Epilepsiemodel gelten, weisen eine
Erhöhung des Synaptophysin-Synaptobrevin-Komplexes im Vergleich zu
unstimulierten Kontrolltieren auf. Diese vorläufigen Ergebnisse weisen darauf
hin, daß eine gesteigerte synaptische Aktivität mit einer erhöhten
Synaptophysin- Synaptobrevin-Komplexbildung einhergeht.
Der Synaptophysin-Synaptobrevin-Komplex ist wahrscheinlich ein Indikator auf
der Ebene des Vesikels für entwicklungsabhängige synaptische Plastizität.
Zusätzlich kann er aber auch zu synaptischer Plastizität im adulten Gehirn
beitragen.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::570 Biowissenschaften; Biologie::570 Biowissenschaften; Biologie
dc.title
The Synaptophysin-Synaptobrevin Complex
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Ferdinand Hucho
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Gudrun Ahnert-Hilger
dc.date.accepted
1999-11-15
dc.date.embargoEnd
2000-08-24
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-1999000648
dc.title.subtitle
A Marker for Synaptic Vesicle maturation
dc.title.translated
Der Synaptophysin-Synaptobrevin Komplex
de
dc.title.translatedsubtitle
Ein Indikator der Reifung synaptischer Vesikel
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000000220
refubium.mycore.transfer
http://www.diss.fu-berlin.de/1999/64/
refubium.mycore.derivateId
FUDISS_derivate_000000000220
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open access