dc.contributor.author
Riebeling, Christian
dc.date.accessioned
2018-06-08T00:13:12Z
dc.date.available
2001-06-20T00:00:00.649Z
dc.identifier.uri
https://refubium.fu-berlin.de/handle/fub188/11640
dc.identifier.uri
http://dx.doi.org/10.17169/refubium-15838
dc.description
Contents
page
Title and contents
1. Introduction 1
1.1 Phospholipids in cellular signalling 1
1.2 Mechanisms of regulation of phosphatidylcholine-specific phospholipase D 3
1.3 Biochemistry of phosphatidylcholine-specific phospholipase D 14
1.3.1 Catalysis 14
1.3.2 Structure 16
1.4 Cellular functions of phosphatidylcholine-specific phospholipase D 18
1.4.1 Phosphatidic acid-derived diacylglycerol 19
1.4.2 Protein targets of phosphatidic acid 20
1.4.3 Vesicle transport 20
1.4.4 Stress fibre formation 21
1.5 Scope of this thesis 23
2. Results 24
2.1 Tyrosine phosphorylation of phospholipase D1 24
2.2 Expression of phospholipase D and differentiation-associated genes in
ceramide induced apoptosis in HaCaT keratinocytes 27
2.3 Expression of phospholipase D and its stimulatory proteins in melanoma
cells and primary cultured melanocytes 30
2.4 Effect of phorbol ester and guanosine-5'-O-(3-thiotriphosphate) on
phospholipase D in melanoma cells 32
2.5 Effect of oleate on phospholipase D in melanoma cells 36
2.6 Effect of pamidronate on melanoma cells 37
3. Discussion 46
3.1 Effect of tyrosine phosphorylation on phospholipase D1 46
3.2 Expression of phospholipase D in ceramide-induced apoptosis 48
3.3 Regulation of phospholipase D in melanoma cells and melanocytes 50
3.4 Action of pamidronate on melanoma cells 52
4.1 Summary 55
4.2 Zusammenfassung 57
5. Materials 59
5.1 Reagents 59
5.2 Cell culture materials 60
5.3 Cell lines 60
5.4 Antibodies 61
5.5 Equipment 62
5.6 Primer 64
6. Methods 65
6.1 Cell culture 65
6.1.1 Growth media and solutions 65
6.1.2 Cultivation of cells 66
6.1.3 Freezing and thawing of cells 66
6.2 Lipid chemistry 67
6.2.1 Preparation of substrate vesicles for the in vitro phospholipase D assay
67
6.2.2 Identification and quantification of radioactively labelled lipids 67
6.3 Enzyme reactions 68
6.3.1 Assay of phospholipase D1 activity 68
6.4 Protein chemistry 69
6.4.1 Preparation of cell lysates and subcellular fractionation 69
6.4.2 Determination of protein concentration 69
6.4.3 Discontinuous sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis
70
6.5 Immunochemistry 73
6.5.1 Purification of antibodies 73
6.5.1.1 Preparation of affinity columns 73
6.5.1.2 Affinity chromatography 74
6.5.2 Denaturing immunoprecipitation 75
6.5.3 Western blotting 76
6.5.4 Immunodetection of blotted proteins 77
6.5.5 Immunohistochemical detection using alkaline phosphatase anti alkaline
phosphatase antibody (APAAP) complexes 79
6.6 Molecular biology 81
6.6.1 Isolation of total RNA 81
6.6.2 Determination of nucleic acid concentration 82
6.6.3 Synthesis of complementary DNA 82
6.6.4 Polymerase chain reaction 83
6.6.5 Agarose gel electrophoresis 84
6.7 Cell biology 85
6.7.1 Preparation of pervanadate 85
6.7.2 Measurement of proliferation 85
6.7.3 Determination of cytotoxicity 86
6.7.4 Detection of apoptosis 87
7. References 89
8. List of publications 108
8.1 Original publications 108
8.2 Short publications 108
8.3 Manuscripts 109
Curriculum vitae I
Acknowledgements II
dc.description.abstract
4.1 Summary
The role and function of phospholipase D in cellular proliferation,
differentiation and apoptosis is still not understood. Here, I describe the
regulation of phospholipase D in some aspects of these cellular processes and
the possible therapeutic intervention in one of these pathways.
The role of tyrosine phosphorylation in regulation of phospholipase D1 was
investigated using a protein tyrosine phosphatase inhibitor. The induced
accumulation of tyrosine phosphorylated proteins was accompanied by increased
phospholipase D1 activity in vitro. Immunoprecipitation demonstrated that
phospholipase D1 is not directly tyrosine phosphorylated in HaCaT
keratinocytes in contrast to HL60 cells. These effects can be abolished using
a protein tyrosine kinase inhibitor. As shown by Ras overexpressing HaCaT
keratinocytes, the Ras/Raf/mitogen activated protein kinase pathway is not
involved. This shows that tyrosine phosphorylation is a pathway indirectly
regulating phospholipase D1.
Transcriptional regulation of phospholipase D in ceramide-induced apoptosis
affects phospholipase D1. I could show that several differentiation-associated
genes including phospholipase D1 are downregulated whereas members of the AP-1
transcription factor are upregulated. AP-1 is involved in the expression of
differentiation-associated genes but the data presented suggest that the
subunits which are upregulated in apoptosis form a repressor. In contrast,
levels of phospholipase D2 mRNA are unchanged.
Moreover, I demonstrate that malignant melanoma exhibits augmented
phospholipase D1 activity in comparison to primary cultured melanocytes. This
increase is attained through enhanced protein expression in degenerated cells.
In addition, although protein kinase Ca expression is not altered, activation
of phospholipase D1 by phorbol ester is marginal in melanocytes in contrast to
melanoma cells suggesting loss of an inhibitory factor of this interaction.
Cytoskeletal reorganisation is important for metastasis, and phosphatidic acid
and the phospholipase D1 regulating Rho family proteins are involved in this
process. Pamidronate interferes with Rho action via altering its membrane
association. Here, I can show that pamidronate strongly induces apoptosis in
melanoma cells. Addition of farnesol or geranylgeraniol reduces apoptosis by
pamidronate with geranylgeraniol being a stronger inhibitor. This suggests
geranylgeranylation being the more important step in pamidronate-induced
apoptosis. However, one of the cell lines tested, Mel2A, is resistant against
pamidronate mediated inhibition of proliferation and induction of apoptosis.
This resistance is not achieved by alteration of the bax/bcl-2 ratio as was
shown by bcl-2 overexpressing A375 cells. The levels of RhoB mRNA expression
show no significant difference between melanoma cells and melanocytes. RhoA
and RhoC in contrast are elevated in melanoma cells underscoring them as
possible therapeutical targets. Although cytosolic RhoA levels are increased
in all four melanoma cell lines after pamidronate treatment, levels of
membrane-bound RhoA are not or only slightly altered. This suggests that
decreased geranylgeranylation is counteracted by increased expression of Rho
proteins. It remains to be investigated if the metastatic potential of these
cells is nevertheless decreased.
de
dc.description.abstract
4.2 Zusammenfassung
Die Rolle und Funktion der Phospholipase D in Zell-Proliferation,
Differenzierung und Apoptose ist bislang nur wenig verstanden. In dieser
Arbeit beschreibe ich die Regulation der Phospholipase D in einigen Aspekten
dieser zellulärer Prozesse und eine mögliche therapeutische Intervention in
einen dieser Signalwege.
Die Rolle der Tyrosinphosphorylierung in der Regulation der Phospholipase D1
wurde mittels eines Protein-Tyrosin-Phosphatase-Inhibitors untersucht. Die
induzierte Akkumulation an tyrosinphosphorylierten Proteinen wurde von einer
gesteigerten in vitro Phospholipase D-Aktivität begleitet. In
Immunpräzipitationsexperimenten konnte gezeigt werden, dass die Phospholipase
D1 in HaCaT Keratinozyten im Gegensatz zu HL60 Zellen nicht direkt
tyrosinphosphoryliert wird. Beide Effekte konnten durch einen Tyrosin-Kinase-
Inhibitor aufgehoben werden. Der Ras/Raf/Mitogen-aktivierte Protein-Kinase-
Signalweg ist hierbei nicht beteiligt, wie mit Ras-überexprimierenden HaCaT
Keratinozyten gezeigt werden konnte. Phospholipase D1 wird indirekt über
Tyrosinphosphorylierung reguliert.
Phospholipase D1 wird in der Ceramid-induzierten Apoptose transkriptionell
reguliert. Verschiedene Differenzierungs-assoziierte Gene wie auch
Phospholipase D1 werden herunterreguliert während Untereinheiten des
Transkriptionsfaktors AP-1 verstärkt exprimiert werden. AP-1 ist an der
Expression von differenzierungsassoziierten Genen beteiligt. Die hier
präsentierten Daten deuten aber darauf hin, dass die gebildeten Untereinheiten
an der Bildung eines Repressors beteiligt sind. Die Expression der
Phospholipase D2 verändert sich dagegen nicht.
Im weiteren konnte ich zeigen, dass Zelllinien vom malignen Melanom eine
erhöhte Phospholipase D1-Aktivität im Vergleich zu primären Melanozyten
besitzen. Während die mRNA-Expression nicht verändert ist, ist die Protein-
Menge geringer. Zusätzlich ist die Aktivierbarkeit der Phospholipase D1 mit
Phorbolestern in Melanozyten im Gegensatz zu Melanomzellen kaum nachweisbar,
obwohl die Expression der Protein-Kinase Ca sich nicht unterscheidet.
Möglicherweise fehlt ein inhibitorischer Faktor dieser Interaktion.
Die Reorganisation des Zytoskeletts ist ein wichtiger Prozess in der
Metastasierung. Phosphatidsäure und die Phospholipase D1-regulierenden
monomeren G-Proteine der Rho-Familie sind an diesem Vorgang beteiligt.
Pamidronat wirkt auf Rho-Proteine durch Verringerung seiner
Membranassoziation. In dieser Arbeit konnte ich zeigen, dass Pamidronat in
Melanomzellen Apoptose auslösen kann. Die Zugabe von Farnesol oder
Geranylgeraniol verringert die Pamidronat-induzierte Apoptose, wobei
Geranylgeraniol einen stärkeren Inhibitor darstellt. Daraus lässt sich
ableiten, dass die verminderte Geranylgeranylierung der wichtigere Schritt in
der Pamidronate-induzierten Apoptose ist. Eine der Zelllinien, Mel2A, ist
jedoch resistent gegen Pamidronat und zeigt keine verminderte Proliferation
und keine Apoptose. Diese Resistenz ist nicht durch ein verändertes Bax/Bcl-2
Ratio verursacht wie mit Bcl-2 überexprimierenden A375 Melanomzellen gezeigt
wurde. Die Expression der mRNA von RhoB zeigt keinen starken Unterschied
zwischen Melanomzellen und Melanocyten. RhoA und RhoC dagegen sind in
Melanomzellen stärker exprimiert, was RhoA und RhoC als mögliche
therapeutische Ziele unterstreicht. Während der zytosolische Gehalt an RhoA
bei allen vier Melanomzelllinien nach Pamidronat-Behandlung ansteigt, ist in
Membranfraktionen die Menge an RhoA nicht verändert. Möglicherweise wirkt eine
erhöhte Expression des RhoA-Proteins der verminderten Geranylgeranylierung
entgegen. Ob das metastatische Potential durch Pamidronat beeinflusst wird
muss im Weiteren noch untersucht werden.
de
dc.rights.uri
http://www.fu-berlin.de/sites/refubium/rechtliches/Nutzungsbedingungen
dc.subject
phospholipase D
dc.subject
phosphatidylcholine
dc.subject
ADP-ribosylation factor
dc.subject.ddc
500 Naturwissenschaften und Mathematik::540 Chemie::540 Chemie und zugeordnete Wissenschaften
dc.title
Mechanisms of Regulation of Phospholipase D Isoforms - Involvement in
Differentiation and Apoptosis
dc.contributor.firstReferee
Prof. Dr. Dr. Christoph C. Geilen
dc.contributor.furtherReferee
Prof. Dr. Werner Reutter
dc.date.accepted
2001-06-25
dc.date.embargoEnd
2001-06-26
dc.identifier.urn
urn:nbn:de:kobv:188-2001001007
dc.title.translated
Regulationsmechanismen von Phospholipase D-Isoformen - Einfluß auf
Differenzierung und Apoptose
de
refubium.affiliation
Biologie, Chemie, Pharmazie
de
refubium.mycore.fudocsId
FUDISS_thesis_000000000410
refubium.mycore.transfer
http://www.diss.fu-berlin.de/2001/100/
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FUDISS_derivate_000000000410
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